外引美国玉米自交系抗性评价及遗传多样性分析
摘要
玉米种质基础狭窄已成为选育突破性品种的重要障碍之一,因此必须加强种质引进、改良和创新工作,这是拓宽我国种质资源基础的重要途径。本试验以引进的58份美国玉米自交系和4个国内标准测验种为试验材料,通过田间人工接种方法鉴定评价了引进自交系对玉米丝黑穗病及大斑病的抗性水平；并通过SSR分子标记技术分析了这些自交系的遗传多样性；同时采用NCⅡ遗传交配设计通过两年一点鉴定研究了其中26份自交系的配合能力及杂种优势关系。其结果对于引进美国自交系的直接利用和改良具有重要理论价值。主要研究结果如下：
1.58份美国自交系中,抗玉米丝黑穗的自交系占自交系总数的50%,抗大斑病的自交系占65.52%,抗病比例比较高,有19份自交系同时抗丝黑穗病和大斑病,占自交系总数的32.8%。其中高抗丝黑穗、中抗大斑病的自交系有：B90、B112、B124、B125、LH38和IRF240；中抗丝黑穗、中抗大斑病的自交系：B93、B100、B116、IRF321、IRF185、IRF233、IRF236和IRF252；抗丝黑穗、中抗大斑病的自交系包括：B106、B109、LH104、IRF291和C.1.31A。其中Reid血缘同时抗丝黑穗病和大斑病的自交系所占抗病自交系的比例最高,达57。9%。
2.55对SSR引物在62个自交系间共检测出296个等位基因变异,每对引物检测出2-11个等位基因,涉及55个SSR位点,每个位点平均5.38个等位基因变异。每个位点的多态信息量(PIC)变化为0.14-0.85,平均PIC为0.633,其中bnlg197位点PIC最大0.85,phi055位点PIC最小
3.利用UPGMA方法将62份自交系划分为5个类群,第一群包括丹340、B120、B93、B100和B102,属于旅大红骨类群；第二群包括黄早4和B108,属于唐四平头类群；第三群又包括两个亚群：(Ⅰ)掖478、B89、B105、B94、B111、B101、B109、B104、B110、B117、B98、B113和B115；(Ⅱ)IRF310、IRF317、IRF311、IRF315、IRF316、IRF318、IRF314、IRF319、C.1.31A、IRF312、IRF320、IRF313、LH38、LH104、IRF321、LH39、IRF233、IRF236、IRF291、LH109、IRF240、IRF185和IRF252,属于Reid种质类群；第四群包括Mo17、B90、B124、B97、B118、B119、B116、B122、B123、B125、B91、B112、B99、B121、B95、B106,属于Lancaster类群；第五群包括：B103、B107和B114。划分结果与系谱来源基本一致。5份未知血缘的自交系中,自交系B108划分到唐四平头群；C.1.31A划分到Reid群；B103、B107和B114仍然不能归属到某一类群中。
4.配合力分析表明,B104、IRF236、B110、IRF240、B106、B116、B97、B90、B98、IRF315、IRF185和B114的单株产量一般配合力效应较高且都为正值,其与产量相关的穗长、穗粗、行粒数、百粒重、出籽率等性状一般配合力效应也较高。单株产量特殊配合力效应前10位的杂交组合是黄早4×IRF236、Mo17×LH39、掖478×B123、丹340×B104、掖478×B124、丹340×B97、Mo17×B102、掖478×B121、掖478×B97、丹340×IRF320,其相应的单株产量也排在前10位。
5.2个杂优模式背景下单株产量特殊配合力效应前10位的杂交组合是黄早4×IRF236、黄早4×B104、Mo17×B102、丹340×B97、掖478×B97、Mo17×LH39、掖478×B123、丹340×B104、掖478×IRF311和丹340×IRF320。
6.本研究分别利用两种方法划分杂种优势类群,供试的26个自交系中有18份自交系能够明确的划分到四大类群中,其中6份自交系的两种划分结果一致,即B100、B102、B104、IRF317、IRF236和IRF240。其余12个自交系利用现有的试验数据进行了比较分析后划分了类群,同时也针对系谱来源得到了验证。
7.通过杂种优势关系分析,26个美国自交系的主要利用途径主要有：Reid群×唐四平头群(B97、B123)和Reid群×旅大红骨群(B110、B116)；唐四平头群×Reid群(B104、IRF236、IRF240)。
8.本论文的创新性在于在我国首次采用人工接种鉴定评价了58份外引美国自交系对玉米丝黑穗病和大斑病的抗性,首次明确了其中5份未知血缘美国自交系的类群,并研究了部分美国自交系的配合力和杂种优势利用途径。
Narrow germplasm has become one of the important obstacles in maize breeding, it is necessary to strengthen germplasm introduction, improvement and innovation, which is an important way to broading germplasm resources. In this study, the 58 America maize inbred lines and 4 standard tester were used as experimental material to evaluated maize head smut and leaf blight resistance leve and analysis the genetic diversity by SSR markers; meanwhile evaluated the combining ability and heterosis relationship of 26 inbred lines with NC II design. The result as the important theoretical value could be used for direct use and improvement. The major findings are as follows:
1.58 inbred lines, resistance to head smut occupy to 50%, resistance to leaf blight occupy to 65.52%; 19 inbred lines resistance both two diseases occupy to 32.8%, among them B90, B112, B124, B125, LH38 and IRF240 high resistant to head smut and moderately resistant to leaf blight; B106, B109, LH104, IRF291 and C.1.31A resistant to head smut and moderately resistant to leaf blight; B93, B100, B116, IRF321, IRF185, IRF233, IRF236, IRF and IRF252 moderately resistant to head smut and leaf blight; meanehile inbred lines belong to Reid population both resistance to head smut and leaf blight occupy to 57.9%.
2.296 alleles detected by 55 SSR primer pairs, each primer detected 2 to 11 alleles,5.38 average per locus. The change of each locus polymorphism information content (PIC) is 0.14-0.85, the average PIC was 0.633, largest PIC is 0.85 at the sites bnlg197, phi055 had the minimum PIC.
3.296 alleles detected by 55 SSR primer pairs, each primer detected 2 to 11 alleles,5.38 average per locus. The change of each locus polymorphism information content (PIC) is 0.14-0.85, the average PIC was 0.633, largest PIC is 0.85 at the sites bnlgl97, phi055 had the minimum PIC.Totol of 62 inbred lines,58 inbred lines and 4 national standard tester, were divided into five groups by UPGMA method. First group, Dan 340, B120, B93, B100 and B102 are belong to Ludahonggu group; second group, huangzao4 and B108 are belong to Tangsipingtou group; the third group includes two subgroups:(Ⅰ) Ye 478, B89, B105, B94, B111, B101, B109, B104, B110, B117, B98, B113 and B115; (Ⅱ) IRF310, IRF317, IRF311, IRF315, IRF316, IRF318, IRF314, IRF319, C.1.31A, IRF312, IRF320, IRF313, LH38, LH104, IRF321, LH39, IRF233, IRF236, IRF291, LH109, IRF240, IRF 185 and IRF252 are belong to Reid group; the fourth group, including Mo17, B90, B124, B97, B118, B119, B116, B122, B123, B125, B91, B112, B99, B121, B95, B106 are belong to Lancaster group; the fifth group, includeB103, B107 and B114. Division results consistent with the pedigree,5 unknown inbred lines B108, C.1.31A B103、B107and B114,2 inbred lines were divided into different group. B108 diveded into Tangsipingtou; C.1.31A diveded into Reidgroup; B103、B107 and B114 still could not divided into any group.
4. Analysis of combining ability showed that, B104, IRF236, B110, IRF240, B106, B116, B97, B90, B98, IRF315, IRF185 and B114 had high and positive general combining ability of yield, yield-related characters as ear length, ear diameter, row grains,100-grain weight and seed-producing percentage also had high general combining ability. Top 10 hybrid combinations with high specific combining ability of yield per plant are Huangzao 4×IRF236, Mo17×LH39, Ye 478×B123, Dan 340×B104, Ye 478×B124, Dan 340×B97, Mo17×B102, Ye 478×B121, Ye 478×B97 and Dan 340×IRF320, the corresponding yield per plant are the top 10.
5. Top 10 of the crosses with high conbining ability by heterosis analysis were huangzao4×IRF236、huangzao 4×B104、Mo17×B102、Dan340×B97×Ye478×B97、Mo17×LH39、Ye 478×B123、Dan 340×B104、Ye478×IRF311and Dan 340×IRF320.
6. In this study two method were used for Heterotic groups divide,18 of 26 inbred lines could divided into the 4 major Heterotic groups, amond them 6 inbred lines had the sane result diveded by two methid which were B100、B102、B104、IRF317、IRF236 and IRF240. The other 10 inbred lines divided into different groups by the experiment data, the the result was verification by the Pedigree.
7. The main utilition of the 26 Amercian inbred lines were ReidxTangshipingtou (B97、B123), Reid×Ludahonggu(B110、B116), Tangshipingtou×Reid(B104, IRF236, IRF240).
8. The innovation of the study was evaluated the resistance to head smut and leaf blight of 58 Amercian inbred lines the first time, meanwhile identification consanguinity of 5 Amercian inbred line and the tested combining ability and heterotic.
1.58份美国自交系中,抗玉米丝黑穗的自交系占自交系总数的50%,抗大斑病的自交系占65.52%,抗病比例比较高,有19份自交系同时抗丝黑穗病和大斑病,占自交系总数的32.8%。其中高抗丝黑穗、中抗大斑病的自交系有：B90、B112、B124、B125、LH38和IRF240；中抗丝黑穗、中抗大斑病的自交系：B93、B100、B116、IRF321、IRF185、IRF233、IRF236和IRF252；抗丝黑穗、中抗大斑病的自交系包括：B106、B109、LH104、IRF291和C.1.31A。其中Reid血缘同时抗丝黑穗病和大斑病的自交系所占抗病自交系的比例最高,达57。9%。
2.55对SSR引物在62个自交系间共检测出296个等位基因变异,每对引物检测出2-11个等位基因,涉及55个SSR位点,每个位点平均5.38个等位基因变异。每个位点的多态信息量(PIC)变化为0.14-0.85,平均PIC为0.633,其中bnlg197位点PIC最大0.85,phi055位点PIC最小
3.利用UPGMA方法将62份自交系划分为5个类群,第一群包括丹340、B120、B93、B100和B102,属于旅大红骨类群；第二群包括黄早4和B108,属于唐四平头类群；第三群又包括两个亚群：(Ⅰ)掖478、B89、B105、B94、B111、B101、B109、B104、B110、B117、B98、B113和B115；(Ⅱ)IRF310、IRF317、IRF311、IRF315、IRF316、IRF318、IRF314、IRF319、C.1.31A、IRF312、IRF320、IRF313、LH38、LH104、IRF321、LH39、IRF233、IRF236、IRF291、LH109、IRF240、IRF185和IRF252,属于Reid种质类群；第四群包括Mo17、B90、B124、B97、B118、B119、B116、B122、B123、B125、B91、B112、B99、B121、B95、B106,属于Lancaster类群；第五群包括：B103、B107和B114。划分结果与系谱来源基本一致。5份未知血缘的自交系中,自交系B108划分到唐四平头群；C.1.31A划分到Reid群；B103、B107和B114仍然不能归属到某一类群中。
4.配合力分析表明,B104、IRF236、B110、IRF240、B106、B116、B97、B90、B98、IRF315、IRF185和B114的单株产量一般配合力效应较高且都为正值,其与产量相关的穗长、穗粗、行粒数、百粒重、出籽率等性状一般配合力效应也较高。单株产量特殊配合力效应前10位的杂交组合是黄早4×IRF236、Mo17×LH39、掖478×B123、丹340×B104、掖478×B124、丹340×B97、Mo17×B102、掖478×B121、掖478×B97、丹340×IRF320,其相应的单株产量也排在前10位。
5.2个杂优模式背景下单株产量特殊配合力效应前10位的杂交组合是黄早4×IRF236、黄早4×B104、Mo17×B102、丹340×B97、掖478×B97、Mo17×LH39、掖478×B123、丹340×B104、掖478×IRF311和丹340×IRF320。
6.本研究分别利用两种方法划分杂种优势类群,供试的26个自交系中有18份自交系能够明确的划分到四大类群中,其中6份自交系的两种划分结果一致,即B100、B102、B104、IRF317、IRF236和IRF240。其余12个自交系利用现有的试验数据进行了比较分析后划分了类群,同时也针对系谱来源得到了验证。
7.通过杂种优势关系分析,26个美国自交系的主要利用途径主要有：Reid群×唐四平头群(B97、B123)和Reid群×旅大红骨群(B110、B116)；唐四平头群×Reid群(B104、IRF236、IRF240)。
8.本论文的创新性在于在我国首次采用人工接种鉴定评价了58份外引美国自交系对玉米丝黑穗病和大斑病的抗性,首次明确了其中5份未知血缘美国自交系的类群,并研究了部分美国自交系的配合力和杂种优势利用途径。
Narrow germplasm has become one of the important obstacles in maize breeding, it is necessary to strengthen germplasm introduction, improvement and innovation, which is an important way to broading germplasm resources. In this study, the 58 America maize inbred lines and 4 standard tester were used as experimental material to evaluated maize head smut and leaf blight resistance leve and analysis the genetic diversity by SSR markers; meanwhile evaluated the combining ability and heterosis relationship of 26 inbred lines with NC II design. The result as the important theoretical value could be used for direct use and improvement. The major findings are as follows:
1.58 inbred lines, resistance to head smut occupy to 50%, resistance to leaf blight occupy to 65.52%; 19 inbred lines resistance both two diseases occupy to 32.8%, among them B90, B112, B124, B125, LH38 and IRF240 high resistant to head smut and moderately resistant to leaf blight; B106, B109, LH104, IRF291 and C.1.31A resistant to head smut and moderately resistant to leaf blight; B93, B100, B116, IRF321, IRF185, IRF233, IRF236, IRF and IRF252 moderately resistant to head smut and leaf blight; meanehile inbred lines belong to Reid population both resistance to head smut and leaf blight occupy to 57.9%.
2.296 alleles detected by 55 SSR primer pairs, each primer detected 2 to 11 alleles,5.38 average per locus. The change of each locus polymorphism information content (PIC) is 0.14-0.85, the average PIC was 0.633, largest PIC is 0.85 at the sites bnlg197, phi055 had the minimum PIC.
3.296 alleles detected by 55 SSR primer pairs, each primer detected 2 to 11 alleles,5.38 average per locus. The change of each locus polymorphism information content (PIC) is 0.14-0.85, the average PIC was 0.633, largest PIC is 0.85 at the sites bnlgl97, phi055 had the minimum PIC.Totol of 62 inbred lines,58 inbred lines and 4 national standard tester, were divided into five groups by UPGMA method. First group, Dan 340, B120, B93, B100 and B102 are belong to Ludahonggu group; second group, huangzao4 and B108 are belong to Tangsipingtou group; the third group includes two subgroups:(Ⅰ) Ye 478, B89, B105, B94, B111, B101, B109, B104, B110, B117, B98, B113 and B115; (Ⅱ) IRF310, IRF317, IRF311, IRF315, IRF316, IRF318, IRF314, IRF319, C.1.31A, IRF312, IRF320, IRF313, LH38, LH104, IRF321, LH39, IRF233, IRF236, IRF291, LH109, IRF240, IRF 185 and IRF252 are belong to Reid group; the fourth group, including Mo17, B90, B124, B97, B118, B119, B116, B122, B123, B125, B91, B112, B99, B121, B95, B106 are belong to Lancaster group; the fifth group, includeB103, B107 and B114. Division results consistent with the pedigree,5 unknown inbred lines B108, C.1.31A B103、B107and B114,2 inbred lines were divided into different group. B108 diveded into Tangsipingtou; C.1.31A diveded into Reidgroup; B103、B107 and B114 still could not divided into any group.
4. Analysis of combining ability showed that, B104, IRF236, B110, IRF240, B106, B116, B97, B90, B98, IRF315, IRF185 and B114 had high and positive general combining ability of yield, yield-related characters as ear length, ear diameter, row grains,100-grain weight and seed-producing percentage also had high general combining ability. Top 10 hybrid combinations with high specific combining ability of yield per plant are Huangzao 4×IRF236, Mo17×LH39, Ye 478×B123, Dan 340×B104, Ye 478×B124, Dan 340×B97, Mo17×B102, Ye 478×B121, Ye 478×B97 and Dan 340×IRF320, the corresponding yield per plant are the top 10.
5. Top 10 of the crosses with high conbining ability by heterosis analysis were huangzao4×IRF236、huangzao 4×B104、Mo17×B102、Dan340×B97×Ye478×B97、Mo17×LH39、Ye 478×B123、Dan 340×B104、Ye478×IRF311and Dan 340×IRF320.
6. In this study two method were used for Heterotic groups divide,18 of 26 inbred lines could divided into the 4 major Heterotic groups, amond them 6 inbred lines had the sane result diveded by two methid which were B100、B102、B104、IRF317、IRF236 and IRF240. The other 10 inbred lines divided into different groups by the experiment data, the the result was verification by the Pedigree.
7. The main utilition of the 26 Amercian inbred lines were ReidxTangshipingtou (B97、B123), Reid×Ludahonggu(B110、B116), Tangshipingtou×Reid(B104, IRF236, IRF240).
8. The innovation of the study was evaluated the resistance to head smut and leaf blight of 58 Amercian inbred lines the first time, meanwhile identification consanguinity of 5 Amercian inbred line and the tested combining ability and heterotic.
引文
A.Forrest Troyer,姚洁.美国当代玉米种质资源的历史演变.Ⅰ.种族与品质.作物杂志.3，4～9
白金恺.1997.杂粮作物病害.北京：中国农业出版社.47～59
白玉.2007.DNA分子标记技术及其应用.安徽农业科学.35(24)：7422-7424
布仁巴雅尔,徐淑兰,冯至兰.1981.玉米丝黑穗病发病条件的研究.植物病理学报.11(4)：18～35
陈彦惠等.1995.玉米杂种优势类群和模式的研究.河南农业大学学报.29(4)：341～347
陈俊意,徐莉.2009.玉米自交系遗传多样性的SSR分析.西南农业学报.22(1)：29～31
陈华,姚源松.2004.利用SSR标记划分我国北方主要玉米自交系杂种优势群.新疆农业大学硕士学位论文
陈泽辉,高翔,祝云芳.2005Suwan与我国四大种质的配合力和杂种优势分析.玉米科学.13(1)：5～9
陈卫国,李炳林.2005.利用SSR标记分析27个玉米群体的遗传关系.山西农业大学硕士学位论文
程伟东,时成俏,覃兰秋.2001.不同来源超甜玉米种质自交系的配合力分析.玉米科学.9(3)：3～7
池书敏,刘志增.1995.几个常用玉米自交系的优势类群分析.河北农业大学学报.18(1)：22～26
池书敏,孟义江,刘志增,等.1998.玉米杂种优势划分及其杂交模式的研究及过氧化物酶、酯酶和醇溶蛋白多态性的聚类分析.华北农学报.13(2)：35～41
曹如槐,王晓玲,任建华等.1986.玉米对丝黑穗病抗性遗传研究.植物病理学报.16(2)：93-98
程品冰,高卫东.2007.玉米抗大斑病种质的抗性基因分析.中国农业科学院硕士学位论文
董玲,金益,王振华.2005.玉米资源抗丝黑穗病快速鉴定方法的初步研究.西南农业学报.18(5)：653～657
董怀玉,徐秀得,姜钰.2003辽宁省玉米丝黑穗病发生原因分析及防治建议.辽宁省农业科学.(2)：39～40
董玲,金益,王振华.2005.玉米资源抗丝黑穗病快速鉴定方法的初步研究.河南农业学报.18(5)：653～657
董海合,李凤华等.2005.玉米种质资源与种质创新研究的现状.天津农业科学.11(2)：25～27
代秀云,于明彦,许明学等.2008.玉米种质改良问题探讨.玉米科学.16(1)：56～58
邓凌炜.2003.温带和热带玉米群体杂种优势关系的初步研究.中国农业科学院硕士学位论文
段永钊,李兴鑫,艾方珍等.1992.陕西省玉米丝黑穗病抗源筛选与鉴定.西北农业学报.1(4)：83～86
杜金友,黎裕,王天宇等.2003.SSR和AFRP分析玉米遗传多样性的研究.华北农学报.18(1)：59～63
丁声俊.2007.美国玉米资源开发利用的新趋势及对中国的借鉴.世界农业.11(总343)47～51
丁孝营.2007.玉米外来种质遗传改良材料的杂种优势表现及亲缘关系的研究.吉林农业大学硕士学位论文
鄂洋,林凤.2009.分子标记技术在玉米大斑病抗性基因研究中的应用.玉米科学.17(3)：64～67
关强,张月学等.2008.DNA分子标记的研究进展及几种新型分子标记技术.黑龙江农业科学.(1)：102～104
高洁,祁新,蔚荣海等2006.玉米种质资源对丝黑穗病的抗性鉴定.吉林农业大学学报.28(2)：142～151
高树仁.2005.玉米抗丝黑穗病遗传分析及数量性状基因定位.吉林大学.中国博士学位论文全文数据库.97～98
高卫东,戴法超,朱小阳.1997.玉米种质资源对四种病害的抗性鉴定. 植物保护学报.24(2)：191～192
郭满库,刘永刚,王晓鸣.2007.玉米自交系及群体材料抗丝黑穗病鉴定与评价.玉米科学.15(5)：30～33
胡文斌,李学宝,扶惠华.2008.RAPD技术在玉米自交系亲缘关系鉴定中的应用.华中师范大学学报(自然科学版).42(2)：278～281
胡丹东,赵久然.2007.DNA分子标记技术及其在玉米育种中的应用.甘肃农业大学学报.第6期92-98
姜树坤,马慧,刘君等.2007.利用SRAP标记分析玉米遗传多样性.分子植物育种.5(3)：412～416
纪伟波,何海军,赵松涛等.2010.黑龙江玉米大斑病菌生理分化研究.玉米科学.18(1)：128～130,134
荆绍凌,赵树仁,叶青江等.2008.玉米抗病性遗传改良.玉米科学.16(5)：37～41
吉士东,蒋基建.2002.玉米改良Reid种质自交早代配合力分析及其合成群体评价.延边大学硕士学位论文
来永才.2003.南斯拉夫玉米种质资源的评价及利用研究.东北农业大学农业推广硕士 学位论文
马丽君,吴纪昌,王作英等.1996.玉米种质资源对大斑病的抗性鉴定.玉米科学.第4期：18～21
聂永心,潘光堂.2003.利用SSR分子标记对四川常用玉米自交系杂种优势群划分的研究.四川农业大学硕士学位论文
石云素,董玉琛.2008.玉米重要自交系遗传多样性分析及产量相关性状QTL研究.博士学位论文
矫树凯.1985.玉米对丝黑穗病抗性的遗传研究.吉林农业科学.40(3)：51～57
晋齐鸣,王晓鸣,王作英等.2003.东北春玉米区玉米丝黑穗病大发生原因及对策.玉米科学.11(1)：86～87
焦仁海,孙发明,刘兴二.2006.玉米DNA分子标记及其研究进展.农业生物技术科学.第4期：48～51
李丽华,潘光堂.2007.新选优良玉米自交系遗传多样性分析及其指纹图谱构建.四川农业大学硕士学位论文
李明顺,张世煌,李新海等.2002.根据产量特殊配合力分析玉米自交系杂种优势群.中国农业科学.35(6)：600～605
李明顺,张世煌.2005.13个玉米群体的配合力和遗传多样性分析.中国农业科学院博士学位论文
李建华,邓贵才,吴学忠.2004.外来种质资源在毕节地区玉米育种中的应用.贵州农业科学.32(5)：90～91
李宝英,郑铁军,郭玉莲.2005.玉米丝黑穗病发病条件的研究.玉米科学.13(4)：121～123
李竞雄主编.玉米育种研究进展.1992.北京：科学出版社.8-14.
李新海,袁力行,李晓辉等.2003.利用SSR标记划分70份我国玉米自交系的杂种优势群中国农业科学36(6)：622～627
李向拓,王辉.2005.热带玉米群体POB21和POB32在温带改良中遗传多样性的研究.西北农林科技大学硕士学位论文
李海明,胡瑞法,张世煌.2005.外来种质对中国玉米生产的遗传贡献.中国农业科学.38(11)：2189-2197
刘聪莉.1997.鉴定玉米对丝黑穗病抗性的简易方法.莱阳农学院学报.14(4)：259-260
刘新芝,彭泽斌等.1998.采用RAPD分子标记、表型和杂种优势聚类分析法对玉米自交系类群的划分.华北农学报.13(4)：36～41
刘宏魁,原亚萍.2008.吉林省骨干玉米自交系遗传多样性分析与数据构建.吉林大学硕士学位论文
刘治先,赵宝和,韩静等.2003.美国玉米自交系的种质基础分析.山东农业科学第5 期,23～25
罗娜,金益,董玲等.2007.浅谈玉米抗丝黑穗病育种.黑龙江省农业科学.(1)：13～16
鲁宝良,刘日尊,赵文媛.2004.玉米丝黑穗病发生趋于严重的原因及抗病育种对策.辽宁农业科学.(2)：27～28
林季周.1981.论玉米自交系的配合力.陕西农业科学.1：1～5
马秉元,李亚玲,龙书生等.1997.陕西省玉米品种抗病性研究进展与分析.玉米科学.5(4)：67～71
马沛卿,王晓玲,王志等.1997.山西省玉米新品种(系)抗病性鉴定与评价.山西农业科学.25(1)：70～73
番兴明,陈洪梅,谭静等.2003.利用配合力和SSR标记对热带和温带玉米自交系进行杂种优势群划分.西南农业学报.16(1)：1～8
番兴明,张世煌,谭静等.2003.根据SSR标记划分优质蛋白玉米自交系的杂种优势群.作物学报.第1期.105～110
孙友位,李明顺,张德贵等.2007.利用SSR标记研究85个玉米自交系的遗传多样性.玉米科学.15(6)：19～26
孙友位,张世煌.2007.利用SSR标记分析玉米自交系的遗传多样性.中国农业科学院硕士学位论文
孙淑秦,温雷蕾,董金皋.2005.玉米大斑病菌的生理小种及交配型测定.玉米科学.13(4)：112～113,123
宋淑云,孙秀华,郭文广等.2000.玉米种质资源抗丝黑穗病鉴定.吉林农业科学.25(3)：32-33
宋淑云,孙秀华等.2000.玉米种质资源抗丝黑穗病鉴定.吉林农业科学.25(3)：32-33
田松杰,王天宇.2003.应用分子标记技术研究玉米与其主要野生近缘种的遗传关系及取样策略.中国农业科学院硕士学位论文
腾文涛,李建生.利用分子标记划分玉米杂种优势群及定位农艺性状QTL.中国农业大学硕士学位论文
王会伟,王晓明.2009.玉米抗大斑病Ht2相关基因的差异表达分析.中国农业科学院博士学位论文
王庆华,杨继良等.2002.玉米大斑病抗性基因的DAN分子标记研究进展.玉米科学.10(2)：93-96
王连生,孔令晓,赵聚莹等.2001.玉米新种质资源对多种病害的抗病性鉴定.河北农业大学学报.24(10)：6267
王晓鸣等.2000.玉米自交系和杂交种的抗病特性研究.中国农业科学.33(增刊)：132～ 140
王振华, 鄂文弟,张林等.2006.Mo17抗玉米丝黑穗病的基因效应分析.中国农学通报.22(2)：323～326
王振华,李新海,鄂文弟等.2004.玉米抗丝黑穗病种质鉴定及遗传研究.东北农业大学学报.35(3)：261～267
王振华,姜艳喜,王立丰等.2002.玉米丝黑穗病研究进展.玉米科学.10(4)：61～64
王懿波,王振华,陆利行等.1998.中国玉米种质基础、杂种优势群划分与杂种优势模式研究.玉米科学.第1期
王玉萍,马青.2006.我国玉米大斑病病原菌变异研究.西北农林科技大学硕士学位论文
吴敏生,戴景瑞.2000.AFLP标记与玉米杂种产量、产量杂种优势的预测.植物学报.2(6)：600～604
肖木辑,李明顺,李新海等.2006.东北地区主要玉米自交系的SSR遗传多样性分析.华北农学报.21(增刊)：23～27
薛春生,姜晓颖,高颖等.2009.19种骨干自交系对5种玉米主要病害的抗性鉴定研究初报.玉米科学.17(3)：124～126
谢俊良,陈秀敏,茜大彬.1995.抗玉米大斑病遗传育种研究进展.(1)：30～32
杨继良,王斌.2002.玉米大斑病抗性遗传的研究进展.遗传HEREDITAS(Beijing).24(4): 501-506
杨勇,王鹏文,张树光.2006.SSR标记在糯玉米遗传多样性研究上的应用.玉米科学14(6)：62～65
姚启伦.2007.西南部分玉米地方种质资源的遗传多样性分析.四川农业大学博士学位论文
张世煌,胡瑞法,彭泽斌.2000.玉米育种的需求分析与技术发展方向.中国农业科学.33(增刊)：1～8
张世煌,彭泽斌,李新海.2000.玉米杂种优势和种质扩增、改良和创新.中国农业科学.33(增刊)：34～39
张世煌,石德权,徐家舜等.1995.对两个亚热带优质蛋白玉米群体的适应性混合选择的研究Ⅰ.开花期性状的直接选择影响.作物学报.21(3)：271～280
张文忠,宋殿珍,赵晋锋等.2002.玉米抗丝黑穗病遗传特性研究.玉米科学.10(4)：67～69
张洋.2008.玉米大斑病的发生与防治.杂粮作物.28(2)：116～117
张丽.2003.西南山地丘陵生态区主要玉米自交系SSR遗传多样性及其与杂种优势的关系.四川农业大学硕士学位论文
张文准,臧逢春,张积祥.1992.鲁玉2号对玉米大斑病抗性退化原因的研究.山东农 业科学.第5期：28～30
张大鹏,张树光.2008.黑龙江省玉米自交系遗传潜势及引入外源种质改良效应的分析.黑龙江八一农垦大学硕士学位论文
赵辉,高增贵.2009.玉米大斑病菌(Exserohilum turcicum)生理分化和遗传多态性研究.沈阳农业大学博士学位论文
郑德刚,李明顺,王振华,金益.2006.黑龙江省部分常用玉米自交系遗传多样性分析.东北农业大学报.37(1)：12～17
赵宝荣.2000.玉米自交系资源对大斑病抗病性鉴定.玉米科学.8(1)：91～92
钟昌松.2004.普通和特用玉米遗传多样性的SSR标记研究.西南交通大学研究生学位论文
Ali A,Baggett J R.1990.Inheritance of resistance to head smut disease in corn.Journal of the American Society for Horticultural Science.115(4):668～672
Ali A, Baggett J R.1990. Inheritance of resistance to head smut disease in corn. J Amer Sco Hort Sci.115(4):668～672
Bernardo R, Bourier M, Olive JL.1992. Generation means analysis ofresistance to head smut in maize. Agronnomie. (12):303～306
Baggett J R, Kean D.1989. Reduction of plant height by head smut infection in sweet corn cultivars. Hort Science.24(3):497～499.
Bernardo R, Bourrier M, Olivier J L.1992. Generation means analysis of resistance to head smut in maize. Agronomie. 12:303～306.
Brewbaker J L, Lu X W.1999. Molecular mapping of QTLs conferring resistance to Sporisorium reilianum (Kuhn) Clint. Maize Genetics Cooperation News Letter (MNL).73:36.
Carole M, Christophe R, Alain J, et al.2002. The biological cycle of Sporisoriun reliant f. sp. Zeal:An overview using microscopy. Mycologia.94(3):505～514.
Carson M L, Van Dyke. Effect of light and temperature on expression of partial resistance. Plant Dis,1994,78:519～520
Chardon F, Virlon B, Moreau L, et al.2004. Genetic architecture of flowering time in maize as inferred from quantitative trait loci meta-analysis and synteny conservation with the rice genome. Genetics.168:2169～2185.
Dutzmann S, Duben J.1993. Maiskopbrand zukiienftig auch in Deutschland von Bedeutung. Mais.21:140～142.
Foster J H, Frederikesen R A. Symptoms of head smut in maize seedlings and evaluation of hybrids. Texas Agr. Expt Sta.343:1～4.
Foster J H, Frederikesen. R A.1977. Evaluation of maize for resistance to head smut. Phytopatbol Soc. (4):142.
Gardner C O,Harvey P H, Comstock R E,et al.1953. Dominance of genes controlling quantitative characters in maize.Agron J.45:186～191
Genter C F,Alexander M W.1962.Comparative performance of S1 progenies and test crosses of com.Crop Sci.2:516～519
Goodman M M,Brown W L.1988.Races of corn.Corn and Gorn Improvement. Madison WI.33～79
Gelbart W M.1998. Data base in genetic research. Science.282:659～661.
Gindrat. Revue D.1997. Head smut of maize in Switzerland. Swiss Agriculture.29(4):199～ 200.
Hallauer A R,Miranda Fo JB.1988.Quantitative genetics in maize breeding. Iowa State University Press. Ames Iowa
Hallauer A R.1999. Temperate maize and heterosis. The Genetics and Exploitation of Heterosis in Crops. Mexico City. Mexico.353～360
HallauerA R.2003. Introgression of elite subtropical and tropical gerlasm with U. S. com belt germplasm. North Centtal Regional Com Breeding Meeting American. Iowa State University.25～ 28
Halisky P M.1965. Physiology specialization and genetics of the smut gungi Ⅲ. Botanica Review.31:114～150.
Halisky P M.1963. Head smut of sorghum Sudan grass and corn caused by Sporisorium reilianum (Kuhn) Clint. Hilgardia.34:287～304.
Johal G S and Briggs S P.1992. Reductive activity encoded by the HM1 disease resistance gene in maize. Science.258(6):985～987.
Joannou.Y.M.et.al.1980.Degradation of diazinon by 2,4-dihydroxy-7-methoxy-2H-1,4-benzo-xazin-3(4H)-one in maize. Phytochem.19:1607～1611.
Kapas S, Hinfner K.1973. Study of the resistance and susceptibility of maize hybrids to head smut (Sorosporium holci-sorghi [Riv.] Moeszf. Seae [Pass.] Savul.) in infection trials in 1966～ 71.eviorszagos fajtakiserletek.181～216.
Kispatic J and Lusin V.1952. Head smut of maie Zas+ita Bilic. Plant Prot.12:18～29.
Kruger W, African J.1962. Sporisorium reilianum on maize I. Infection and control stuclies. Sorth Agr.Sci.5:43～56.
Lu X W, Brewbaker J L.1999. Molecular mapping of QTLs conferring resistance to Sphacelotheca reiliana (Kuhn) Clint. Maize Genetics Cooperation News letter (MNL).73:36.
Lu X W, Brewbaker J L, Nourse S M, Moon H G, et al.1999. Mapping quantitativc trait loci conferring resistance to maize streak virus. Maydica.44:313～318.
Lubberstedt T, Xia X C, Tan G, et al.1999. QTL mapping of resistance to Sporisorium reilianum in maize. Theoretical and Applied Genetics.99(3～4):593～598.
Lacy, G H.et al.1979.1nhibition of soft-rotting E. winia spp. strains by 2,4-dihydroxy-7-methoxy-1,4-benzoxazin-3(4H)-one in relation to their pathogeacity on zea mays.Phytopathol.69(7):757～763.
Long, B J. et al.1978 Relationship of hydroxamate concentration in maize and field reaction to Helminthosporium turricum. Crop Sci.18:573～575..
Mackie W W.1920. Head smut in sorghum and maize. Phyto-pathology.10:307～308.
Manninger I.1978. Breeding maize for resistance to common smut and head smut and to stalk and ear rots. Agrartudomanyi Kozlemenyek.37:175～177.
Martinez Carole, Buee Marc, Jauneau Alain, et al.2001. Effects of a fraction from maize root exudates on haploid srains of Sporisorium reilianum f.sp. zeae. Plant and Soil.236(2):145～153.
Matyac C A, Kommedahl T.1985. Factors affecting the development of head smut caused by Sporisorium reilianum on com. Phytopathology.75(5):577～581.
Mehta B K, Frederiksen R A, Collier J, et al.1967. Evaluation of Physiologic Specialization in Sphacelotheca reiliana. Phytopathology.57:925～928.
Martinez C, Roux C, Jauneau A, et al.2002. The biological cycle of Sporisorium reilianum f.sp. zeae:An overview using micaosoopy. Mycologia.94 (3):505～514.
Matyac C A.Kommedahl T.1985.由丝轴黑粉菌诱导的玉米苗褪绿斑及其在抗病鉴定中的应用.烟台师范学院学报(自然科学版).3(1)：70.
Njuguna J G M, Njoroge P G, Jama A N.2003. Epidemiology and maize crop resistance to head smut disease with reference to small-scale maize-dairy farmers in Central Kenya. The BCPC International Congress:Crop Science and Technology.9:999～1004.
Pacheco A C, Dittrich R C.1999. Resistance of commercial maize hybrids to head smut. Agropecuaria Catarinense.12(2):44～45.
Paran I, Michelmore R. Development of reliable PCR-based markers linked to downy Mildew resistance genes in lettuce. Theor. APPI. Genet,1993,85:985～993
Potter A A.1914. Head smut of sorghum and maize. Journal Agriculture Research.2:339～ 368.
Rudner L, Glass G V, Evartt D L, et al.2002. A user's guide to the meta-analysis of research studies. ERIC Clearinghouse on Assessment and Evaluation. University of Maryland. College Park.
Simpson W R.1966. Head smut of corn in Idaho. Plant Disease Reporter.50(4):215～217.
Stromberg E L, Stienstra W C, Kommedahl C A, et al.1984a. Smut expression and resistance of con to Sporisorium reilianum in Minnersota. Plant Disease.68:820～840.
Stromberg E L, Stienstra W C, Kommedahl C A, et al.1984b. Smut expression and resistance of corn to Sporisorium reilianum in Minnersota. Plant Disease.68(10):880～884.
Welz H G, Geiger H H. Genes for resistance to northern corn leaf blight in diverse maizepopulations. Plant Breeding,2000,119(1):1～14
Zaitlin D, Sandra J. DeeMars and Manju Gupta. Linkage of asceond gene for NCLB Resistance to molecular markers in maize. Maize Genetic Cooperator Newsletter,1992,66:69～ 70
Yurku A I, Kisnichan V I, Straistar E M.1997. Methods of producing conditions of infection for head smut and stalk rots of maize. Kukuruzai Sorgo.4:4～8.
白金恺.1997.杂粮作物病害.北京：中国农业出版社.47～59
白玉.2007.DNA分子标记技术及其应用.安徽农业科学.35(24)：7422-7424
布仁巴雅尔,徐淑兰,冯至兰.1981.玉米丝黑穗病发病条件的研究.植物病理学报.11(4)：18～35
陈彦惠等.1995.玉米杂种优势类群和模式的研究.河南农业大学学报.29(4)：341～347
陈俊意,徐莉.2009.玉米自交系遗传多样性的SSR分析.西南农业学报.22(1)：29～31
陈华,姚源松.2004.利用SSR标记划分我国北方主要玉米自交系杂种优势群.新疆农业大学硕士学位论文
陈泽辉,高翔,祝云芳.2005Suwan与我国四大种质的配合力和杂种优势分析.玉米科学.13(1)：5～9
陈卫国,李炳林.2005.利用SSR标记分析27个玉米群体的遗传关系.山西农业大学硕士学位论文
程伟东,时成俏,覃兰秋.2001.不同来源超甜玉米种质自交系的配合力分析.玉米科学.9(3)：3～7
池书敏,刘志增.1995.几个常用玉米自交系的优势类群分析.河北农业大学学报.18(1)：22～26
池书敏,孟义江,刘志增,等.1998.玉米杂种优势划分及其杂交模式的研究及过氧化物酶、酯酶和醇溶蛋白多态性的聚类分析.华北农学报.13(2)：35～41
曹如槐,王晓玲,任建华等.1986.玉米对丝黑穗病抗性遗传研究.植物病理学报.16(2)：93-98
程品冰,高卫东.2007.玉米抗大斑病种质的抗性基因分析.中国农业科学院硕士学位论文
董玲,金益,王振华.2005.玉米资源抗丝黑穗病快速鉴定方法的初步研究.西南农业学报.18(5)：653～657
董怀玉,徐秀得,姜钰.2003辽宁省玉米丝黑穗病发生原因分析及防治建议.辽宁省农业科学.(2)：39～40
董玲,金益,王振华.2005.玉米资源抗丝黑穗病快速鉴定方法的初步研究.河南农业学报.18(5)：653～657
董海合,李凤华等.2005.玉米种质资源与种质创新研究的现状.天津农业科学.11(2)：25～27
代秀云,于明彦,许明学等.2008.玉米种质改良问题探讨.玉米科学.16(1)：56～58
邓凌炜.2003.温带和热带玉米群体杂种优势关系的初步研究.中国农业科学院硕士学位论文
段永钊,李兴鑫,艾方珍等.1992.陕西省玉米丝黑穗病抗源筛选与鉴定.西北农业学报.1(4)：83～86
杜金友,黎裕,王天宇等.2003.SSR和AFRP分析玉米遗传多样性的研究.华北农学报.18(1)：59～63
丁声俊.2007.美国玉米资源开发利用的新趋势及对中国的借鉴.世界农业.11(总343)47～51
丁孝营.2007.玉米外来种质遗传改良材料的杂种优势表现及亲缘关系的研究.吉林农业大学硕士学位论文
鄂洋,林凤.2009.分子标记技术在玉米大斑病抗性基因研究中的应用.玉米科学.17(3)：64～67
关强,张月学等.2008.DNA分子标记的研究进展及几种新型分子标记技术.黑龙江农业科学.(1)：102～104
高洁,祁新,蔚荣海等2006.玉米种质资源对丝黑穗病的抗性鉴定.吉林农业大学学报.28(2)：142～151
高树仁.2005.玉米抗丝黑穗病遗传分析及数量性状基因定位.吉林大学.中国博士学位论文全文数据库.97～98
高卫东,戴法超,朱小阳.1997.玉米种质资源对四种病害的抗性鉴定. 植物保护学报.24(2)：191～192
郭满库,刘永刚,王晓鸣.2007.玉米自交系及群体材料抗丝黑穗病鉴定与评价.玉米科学.15(5)：30～33
胡文斌,李学宝,扶惠华.2008.RAPD技术在玉米自交系亲缘关系鉴定中的应用.华中师范大学学报(自然科学版).42(2)：278～281
胡丹东,赵久然.2007.DNA分子标记技术及其在玉米育种中的应用.甘肃农业大学学报.第6期92-98
姜树坤,马慧,刘君等.2007.利用SRAP标记分析玉米遗传多样性.分子植物育种.5(3)：412～416
纪伟波,何海军,赵松涛等.2010.黑龙江玉米大斑病菌生理分化研究.玉米科学.18(1)：128～130,134
荆绍凌,赵树仁,叶青江等.2008.玉米抗病性遗传改良.玉米科学.16(5)：37～41
吉士东,蒋基建.2002.玉米改良Reid种质自交早代配合力分析及其合成群体评价.延边大学硕士学位论文
来永才.2003.南斯拉夫玉米种质资源的评价及利用研究.东北农业大学农业推广硕士 学位论文
马丽君,吴纪昌,王作英等.1996.玉米种质资源对大斑病的抗性鉴定.玉米科学.第4期：18～21
聂永心,潘光堂.2003.利用SSR分子标记对四川常用玉米自交系杂种优势群划分的研究.四川农业大学硕士学位论文
石云素,董玉琛.2008.玉米重要自交系遗传多样性分析及产量相关性状QTL研究.博士学位论文
矫树凯.1985.玉米对丝黑穗病抗性的遗传研究.吉林农业科学.40(3)：51～57
晋齐鸣,王晓鸣,王作英等.2003.东北春玉米区玉米丝黑穗病大发生原因及对策.玉米科学.11(1)：86～87
焦仁海,孙发明,刘兴二.2006.玉米DNA分子标记及其研究进展.农业生物技术科学.第4期：48～51
李丽华,潘光堂.2007.新选优良玉米自交系遗传多样性分析及其指纹图谱构建.四川农业大学硕士学位论文
李明顺,张世煌,李新海等.2002.根据产量特殊配合力分析玉米自交系杂种优势群.中国农业科学.35(6)：600～605
李明顺,张世煌.2005.13个玉米群体的配合力和遗传多样性分析.中国农业科学院博士学位论文
李建华,邓贵才,吴学忠.2004.外来种质资源在毕节地区玉米育种中的应用.贵州农业科学.32(5)：90～91
李宝英,郑铁军,郭玉莲.2005.玉米丝黑穗病发病条件的研究.玉米科学.13(4)：121～123
李竞雄主编.玉米育种研究进展.1992.北京：科学出版社.8-14.
李新海,袁力行,李晓辉等.2003.利用SSR标记划分70份我国玉米自交系的杂种优势群中国农业科学36(6)：622～627
李向拓,王辉.2005.热带玉米群体POB21和POB32在温带改良中遗传多样性的研究.西北农林科技大学硕士学位论文
李海明,胡瑞法,张世煌.2005.外来种质对中国玉米生产的遗传贡献.中国农业科学.38(11)：2189-2197
刘聪莉.1997.鉴定玉米对丝黑穗病抗性的简易方法.莱阳农学院学报.14(4)：259-260
刘新芝,彭泽斌等.1998.采用RAPD分子标记、表型和杂种优势聚类分析法对玉米自交系类群的划分.华北农学报.13(4)：36～41
刘宏魁,原亚萍.2008.吉林省骨干玉米自交系遗传多样性分析与数据构建.吉林大学硕士学位论文
刘治先,赵宝和,韩静等.2003.美国玉米自交系的种质基础分析.山东农业科学第5 期,23～25
罗娜,金益,董玲等.2007.浅谈玉米抗丝黑穗病育种.黑龙江省农业科学.(1)：13～16
鲁宝良,刘日尊,赵文媛.2004.玉米丝黑穗病发生趋于严重的原因及抗病育种对策.辽宁农业科学.(2)：27～28
林季周.1981.论玉米自交系的配合力.陕西农业科学.1：1～5
马秉元,李亚玲,龙书生等.1997.陕西省玉米品种抗病性研究进展与分析.玉米科学.5(4)：67～71
马沛卿,王晓玲,王志等.1997.山西省玉米新品种(系)抗病性鉴定与评价.山西农业科学.25(1)：70～73
番兴明,陈洪梅,谭静等.2003.利用配合力和SSR标记对热带和温带玉米自交系进行杂种优势群划分.西南农业学报.16(1)：1～8
番兴明,张世煌,谭静等.2003.根据SSR标记划分优质蛋白玉米自交系的杂种优势群.作物学报.第1期.105～110
孙友位,李明顺,张德贵等.2007.利用SSR标记研究85个玉米自交系的遗传多样性.玉米科学.15(6)：19～26
孙友位,张世煌.2007.利用SSR标记分析玉米自交系的遗传多样性.中国农业科学院硕士学位论文
孙淑秦,温雷蕾,董金皋.2005.玉米大斑病菌的生理小种及交配型测定.玉米科学.13(4)：112～113,123
宋淑云,孙秀华,郭文广等.2000.玉米种质资源抗丝黑穗病鉴定.吉林农业科学.25(3)：32-33
宋淑云,孙秀华等.2000.玉米种质资源抗丝黑穗病鉴定.吉林农业科学.25(3)：32-33
田松杰,王天宇.2003.应用分子标记技术研究玉米与其主要野生近缘种的遗传关系及取样策略.中国农业科学院硕士学位论文
腾文涛,李建生.利用分子标记划分玉米杂种优势群及定位农艺性状QTL.中国农业大学硕士学位论文
王会伟,王晓明.2009.玉米抗大斑病Ht2相关基因的差异表达分析.中国农业科学院博士学位论文
王庆华,杨继良等.2002.玉米大斑病抗性基因的DAN分子标记研究进展.玉米科学.10(2)：93-96
王连生,孔令晓,赵聚莹等.2001.玉米新种质资源对多种病害的抗病性鉴定.河北农业大学学报.24(10)：6267
王晓鸣等.2000.玉米自交系和杂交种的抗病特性研究.中国农业科学.33(增刊)：132～ 140
王振华, 鄂文弟,张林等.2006.Mo17抗玉米丝黑穗病的基因效应分析.中国农学通报.22(2)：323～326
王振华,李新海,鄂文弟等.2004.玉米抗丝黑穗病种质鉴定及遗传研究.东北农业大学学报.35(3)：261～267
王振华,姜艳喜,王立丰等.2002.玉米丝黑穗病研究进展.玉米科学.10(4)：61～64
王懿波,王振华,陆利行等.1998.中国玉米种质基础、杂种优势群划分与杂种优势模式研究.玉米科学.第1期
王玉萍,马青.2006.我国玉米大斑病病原菌变异研究.西北农林科技大学硕士学位论文
吴敏生,戴景瑞.2000.AFLP标记与玉米杂种产量、产量杂种优势的预测.植物学报.2(6)：600～604
肖木辑,李明顺,李新海等.2006.东北地区主要玉米自交系的SSR遗传多样性分析.华北农学报.21(增刊)：23～27
薛春生,姜晓颖,高颖等.2009.19种骨干自交系对5种玉米主要病害的抗性鉴定研究初报.玉米科学.17(3)：124～126
谢俊良,陈秀敏,茜大彬.1995.抗玉米大斑病遗传育种研究进展.(1)：30～32
杨继良,王斌.2002.玉米大斑病抗性遗传的研究进展.遗传HEREDITAS(Beijing).24(4): 501-506
杨勇,王鹏文,张树光.2006.SSR标记在糯玉米遗传多样性研究上的应用.玉米科学14(6)：62～65
姚启伦.2007.西南部分玉米地方种质资源的遗传多样性分析.四川农业大学博士学位论文
张世煌,胡瑞法,彭泽斌.2000.玉米育种的需求分析与技术发展方向.中国农业科学.33(增刊)：1～8
张世煌,彭泽斌,李新海.2000.玉米杂种优势和种质扩增、改良和创新.中国农业科学.33(增刊)：34～39
张世煌,石德权,徐家舜等.1995.对两个亚热带优质蛋白玉米群体的适应性混合选择的研究Ⅰ.开花期性状的直接选择影响.作物学报.21(3)：271～280
张文忠,宋殿珍,赵晋锋等.2002.玉米抗丝黑穗病遗传特性研究.玉米科学.10(4)：67～69
张洋.2008.玉米大斑病的发生与防治.杂粮作物.28(2)：116～117
张丽.2003.西南山地丘陵生态区主要玉米自交系SSR遗传多样性及其与杂种优势的关系.四川农业大学硕士学位论文
张文准,臧逢春,张积祥.1992.鲁玉2号对玉米大斑病抗性退化原因的研究.山东农 业科学.第5期：28～30
张大鹏,张树光.2008.黑龙江省玉米自交系遗传潜势及引入外源种质改良效应的分析.黑龙江八一农垦大学硕士学位论文
赵辉,高增贵.2009.玉米大斑病菌(Exserohilum turcicum)生理分化和遗传多态性研究.沈阳农业大学博士学位论文
郑德刚,李明顺,王振华,金益.2006.黑龙江省部分常用玉米自交系遗传多样性分析.东北农业大学报.37(1)：12～17
赵宝荣.2000.玉米自交系资源对大斑病抗病性鉴定.玉米科学.8(1)：91～92
钟昌松.2004.普通和特用玉米遗传多样性的SSR标记研究.西南交通大学研究生学位论文
Ali A,Baggett J R.1990.Inheritance of resistance to head smut disease in corn.Journal of the American Society for Horticultural Science.115(4):668～672
Ali A, Baggett J R.1990. Inheritance of resistance to head smut disease in corn. J Amer Sco Hort Sci.115(4):668～672
Bernardo R, Bourier M, Olive JL.1992. Generation means analysis ofresistance to head smut in maize. Agronnomie. (12):303～306
Baggett J R, Kean D.1989. Reduction of plant height by head smut infection in sweet corn cultivars. Hort Science.24(3):497～499.
Bernardo R, Bourrier M, Olivier J L.1992. Generation means analysis of resistance to head smut in maize. Agronomie. 12:303～306.
Brewbaker J L, Lu X W.1999. Molecular mapping of QTLs conferring resistance to Sporisorium reilianum (Kuhn) Clint. Maize Genetics Cooperation News Letter (MNL).73:36.
Carole M, Christophe R, Alain J, et al.2002. The biological cycle of Sporisoriun reliant f. sp. Zeal:An overview using microscopy. Mycologia.94(3):505～514.
Carson M L, Van Dyke. Effect of light and temperature on expression of partial resistance. Plant Dis,1994,78:519～520
Chardon F, Virlon B, Moreau L, et al.2004. Genetic architecture of flowering time in maize as inferred from quantitative trait loci meta-analysis and synteny conservation with the rice genome. Genetics.168:2169～2185.
Dutzmann S, Duben J.1993. Maiskopbrand zukiienftig auch in Deutschland von Bedeutung. Mais.21:140～142.
Foster J H, Frederikesen R A. Symptoms of head smut in maize seedlings and evaluation of hybrids. Texas Agr. Expt Sta.343:1～4.
Foster J H, Frederikesen. R A.1977. Evaluation of maize for resistance to head smut. Phytopatbol Soc. (4):142.
Gardner C O,Harvey P H, Comstock R E,et al.1953. Dominance of genes controlling quantitative characters in maize.Agron J.45:186～191
Genter C F,Alexander M W.1962.Comparative performance of S1 progenies and test crosses of com.Crop Sci.2:516～519
Goodman M M,Brown W L.1988.Races of corn.Corn and Gorn Improvement. Madison WI.33～79
Gelbart W M.1998. Data base in genetic research. Science.282:659～661.
Gindrat. Revue D.1997. Head smut of maize in Switzerland. Swiss Agriculture.29(4):199～ 200.
Hallauer A R,Miranda Fo JB.1988.Quantitative genetics in maize breeding. Iowa State University Press. Ames Iowa
Hallauer A R.1999. Temperate maize and heterosis. The Genetics and Exploitation of Heterosis in Crops. Mexico City. Mexico.353～360
HallauerA R.2003. Introgression of elite subtropical and tropical gerlasm with U. S. com belt germplasm. North Centtal Regional Com Breeding Meeting American. Iowa State University.25～ 28
Halisky P M.1965. Physiology specialization and genetics of the smut gungi Ⅲ. Botanica Review.31:114～150.
Halisky P M.1963. Head smut of sorghum Sudan grass and corn caused by Sporisorium reilianum (Kuhn) Clint. Hilgardia.34:287～304.
Johal G S and Briggs S P.1992. Reductive activity encoded by the HM1 disease resistance gene in maize. Science.258(6):985～987.
Joannou.Y.M.et.al.1980.Degradation of diazinon by 2,4-dihydroxy-7-methoxy-2H-1,4-benzo-xazin-3(4H)-one in maize. Phytochem.19:1607～1611.
Kapas S, Hinfner K.1973. Study of the resistance and susceptibility of maize hybrids to head smut (Sorosporium holci-sorghi [Riv.] Moeszf. Seae [Pass.] Savul.) in infection trials in 1966～ 71.eviorszagos fajtakiserletek.181～216.
Kispatic J and Lusin V.1952. Head smut of maie Zas+ita Bilic. Plant Prot.12:18～29.
Kruger W, African J.1962. Sporisorium reilianum on maize I. Infection and control stuclies. Sorth Agr.Sci.5:43～56.
Lu X W, Brewbaker J L.1999. Molecular mapping of QTLs conferring resistance to Sphacelotheca reiliana (Kuhn) Clint. Maize Genetics Cooperation News letter (MNL).73:36.
Lu X W, Brewbaker J L, Nourse S M, Moon H G, et al.1999. Mapping quantitativc trait loci conferring resistance to maize streak virus. Maydica.44:313～318.
Lubberstedt T, Xia X C, Tan G, et al.1999. QTL mapping of resistance to Sporisorium reilianum in maize. Theoretical and Applied Genetics.99(3～4):593～598.
Lacy, G H.et al.1979.1nhibition of soft-rotting E. winia spp. strains by 2,4-dihydroxy-7-methoxy-1,4-benzoxazin-3(4H)-one in relation to their pathogeacity on zea mays.Phytopathol.69(7):757～763.
Long, B J. et al.1978 Relationship of hydroxamate concentration in maize and field reaction to Helminthosporium turricum. Crop Sci.18:573～575..
Mackie W W.1920. Head smut in sorghum and maize. Phyto-pathology.10:307～308.
Manninger I.1978. Breeding maize for resistance to common smut and head smut and to stalk and ear rots. Agrartudomanyi Kozlemenyek.37:175～177.
Martinez Carole, Buee Marc, Jauneau Alain, et al.2001. Effects of a fraction from maize root exudates on haploid srains of Sporisorium reilianum f.sp. zeae. Plant and Soil.236(2):145～153.
Matyac C A, Kommedahl T.1985. Factors affecting the development of head smut caused by Sporisorium reilianum on com. Phytopathology.75(5):577～581.
Mehta B K, Frederiksen R A, Collier J, et al.1967. Evaluation of Physiologic Specialization in Sphacelotheca reiliana. Phytopathology.57:925～928.
Martinez C, Roux C, Jauneau A, et al.2002. The biological cycle of Sporisorium reilianum f.sp. zeae:An overview using micaosoopy. Mycologia.94 (3):505～514.
Matyac C A.Kommedahl T.1985.由丝轴黑粉菌诱导的玉米苗褪绿斑及其在抗病鉴定中的应用.烟台师范学院学报(自然科学版).3(1)：70.
Njuguna J G M, Njoroge P G, Jama A N.2003. Epidemiology and maize crop resistance to head smut disease with reference to small-scale maize-dairy farmers in Central Kenya. The BCPC International Congress:Crop Science and Technology.9:999～1004.
Pacheco A C, Dittrich R C.1999. Resistance of commercial maize hybrids to head smut. Agropecuaria Catarinense.12(2):44～45.
Paran I, Michelmore R. Development of reliable PCR-based markers linked to downy Mildew resistance genes in lettuce. Theor. APPI. Genet,1993,85:985～993
Potter A A.1914. Head smut of sorghum and maize. Journal Agriculture Research.2:339～ 368.
Rudner L, Glass G V, Evartt D L, et al.2002. A user's guide to the meta-analysis of research studies. ERIC Clearinghouse on Assessment and Evaluation. University of Maryland. College Park.
Simpson W R.1966. Head smut of corn in Idaho. Plant Disease Reporter.50(4):215～217.
Stromberg E L, Stienstra W C, Kommedahl C A, et al.1984a. Smut expression and resistance of con to Sporisorium reilianum in Minnersota. Plant Disease.68:820～840.
Stromberg E L, Stienstra W C, Kommedahl C A, et al.1984b. Smut expression and resistance of corn to Sporisorium reilianum in Minnersota. Plant Disease.68(10):880～884.
Welz H G, Geiger H H. Genes for resistance to northern corn leaf blight in diverse maizepopulations. Plant Breeding,2000,119(1):1～14
Zaitlin D, Sandra J. DeeMars and Manju Gupta. Linkage of asceond gene for NCLB Resistance to molecular markers in maize. Maize Genetic Cooperator Newsletter,1992,66:69～ 70
Yurku A I, Kisnichan V I, Straistar E M.1997. Methods of producing conditions of infection for head smut and stalk rots of maize. Kukuruzai Sorgo.4:4～8.