用户名: 密码: 验证码:
屋顶长生草离体培养及其形态发生的细胞学与生理生化变化的研究
详细信息    本馆镜像全文|  推荐本文 |  |   获取CNKI官网全文
摘要
屋顶长生草(Sempervivum tectorum)系景天科长生草属多年生常绿草本观赏植物,主要分布在欧洲。其肉质叶有较高的药用价值和保健作用,提取液用于治疗咽喉溃疡,口腔疾病,支气管炎,以及烧伤、烫伤、蚊虫叮咬等皮肤疾病,其保健作用主要体现在其对肌肤的滋养、护肝作用以及泡茶饮用有提神的作用。为了建立屋顶长生草的快繁体系,本文以屋顶长生草的肉质叶为外植体,进行了离体培养、试管苗再生以及相关形态发生的组织学与生理生化特性的研究。主要研究结果如下:
     1、建立了屋顶长生草离体培养体系,我们的研究显示植物激素对屋顶长生草形态发生类型起着重要的调控作用。
     1.1 2,4-D、6-BA与2,4-D;6-BA与NAA加IAA配合使用均能诱导愈伤组织。但是,前者形成的愈伤组织比较疏松,难以分化芽,后者的愈伤组织较致密,易分化芽。
     1.2 叶片培养在愈伤组织诱导培养基上,产生愈伤组织,转入6-BA1mg/l+NAA1mg/l或6-BA的培养基上,则分化不定芽,行器官发生型途径。
     1.3 叶片培养在含一定浓度的6-BA或6-BA 2mg/L+NAA 0.2mg/L培养基上能直接再生芽,行器官型途径,加入GA_3能缩短诱导丛芽及成苗的时间。
     1.4 屋顶长生草的生根以1/2MS为基本培养基,NAA与IAA配合使用效果好,活性炭有利于根的发生和生长。
     2、屋顶长生草离体培养中出现的玻璃化苗现象与丛芽增殖速度过快有关。改善培养条件,控制丛芽过快增殖,如加强光照、减少培养基的用量(1/2MS培养基)、降低培养温度、提高培养基中蔗糖和琼脂浓度以及加入青霉素等措施能有效减少玻璃化苗。
     3、屋顶长生草的叶具有肉质早生植物叶的特点,表皮细胞外有角质层,叶有较密的腺毛分布,气孔器由两个肾形的保卫细胞和两个镰刀形的护卫细胞组成,对控制蒸腾,减少水分损失有重要作用。叶肉细胞没有栅栏组织与海绵组织之分,细胞比较大,有贮水作用。维管束平行排列,导管和筛管分子都很小,为一圈维管束鞘所包围。
    
    4、屋顶长生草离体培养的叶片不定芽来源于近表皮细胞的叶肉细胞脱分化再生
    而成;器官发生型的愈伤组织来源于不同层次的叶肉细胞及维管束鞘细胞的脱分
    化,形成胚性细胞、胚性细胞团,进一步形成愈伤组织并突破表皮细胞而增大。大
    部分叶肉细胞的叶绿体、原生质体解体,初生壁上形成条纹增厚成为管胞。愈伤组
    织的芽分化为内起源。
    5、较系统的研究了屋顶长生草器官发生型形态发生与生理生化变化的相关性。
    结果表明:在细胞脱分化形成愈伤组织、愈伤组织增大突破叶表皮、愈伤组织分化
    芽、不定芽成苗等阶段,淀粉含量呈降低~增高~降低~再增高的变化趋势;蛋白质
    含量呈增高一降低一再增高一再降低的变化趋势;氨基酸与核酸含量的变化都呈增加一增
    加一降低一增加的变化趋势;可溶性糖含量的变化呈降低一增加~降低~降低的变化趋
    势;vc含量的变化呈降低一增加一增加一增加的变化趋势;过氧化物同工酶、脂酶同
    工酶、淀粉酶同工酶的酶谱的变化呈现增加一减少~增多一减少的变化趋势。但三
    种酶的同工酶条带的增加主要出现在愈伤组织的形成和不定芽的再生这两个标志
    性阶段。
Sempervivum tectorum is a perennial succulent ornamental plant that spread widely in Europe. Its fleshy leaves have both pharmaceutical and health functions, the substance extracted from it can cure some skin diseases( such as faucitis, stomatitis, bronchitis, burn, scald, bite and sting, etc. ) and be helpful for skin nourishing, liver protection, furthermore, it can refresh oneself with it as tea. To establish the rapid propagation system, the fleshy leaves as explants were cultured in vitro. Researches on its in vitro culture, plantlets regeneration, characters of physiology and biochemistry and the histology of morphogenesis were conducted on the current paper. The results are as follows:
    1. Optimal mediums for Sempervivum tectorum in vitro propagation and the clone system were established. The research shows that the phytohormone is the key element for morphogenesis of in vitro culture.
    1.1 Callus can be induced on the medium added with 6-BA and 2,4-D and the medium added with 6-BA combined with NAA and IAA. However callus formed on the former medium is loosen than that on the latter one. The former is more difficult for bud differentiation whereas the latter is denser and it's easier for bud differentiation.
    1.2 Plantlets formed from the calli, which is induced from the fleshy leaves cultured on the medium added 2,4-D combined with 6-BA and the medium added with 6-BA 1 mg/L, NAA 1 mg/L and IAA 1 mg/L, after that transferred to the medium added with 6-BA 1 mg/L + NAA 1 mg/L or 6-BA, in a organogeny-type morphogenesis way.
    1.3 Plantlets can be induced directly from the cultured explants on the medium added with 6-BA 2 ml/L + NAA 0.2 ml/L, in a organ-type morphogenesis way. The GA3 added addictively on medium can shorten the duration of buds formation.
    1.4 1/2MS medium combining with NAA and IAA was optimum for rooting of plantlets, the active charcoal was also propitious to that. And rapid propagation system with high reproductive coefficient and reproductive rate was established.
    2. Research on vitrification during the in vitro culture of Sempervivum tectorum was proceed.The results suggested that vitrification can be effectively controlled by strengthening the illumination, reducing the inorganic salt content (to use 1/2MS medium), decreasing the temperature, inducing the content of the saccharose and agar, even adding of antibiotic.
    3. Anatomic structures of Sempervivum tectorum leaf.
    
    
    The Sempervivum tectorum is a typical xerophil, its leaves are characterized with cutin, density gland hair, and the stoma was composed with two kidney safeguard cells and two hook convoy cells, which effectively control the evaporation. The leaf anatomic structure indicated that mesophyll was without the differentiation of palisade and sponge tissue. And the mesophyll cell is large and function as water storage. The vascular bundles distribute parallel; trachea and sieve tube were small and wrapped with vascular sheath.
    4. Characters of physiology and biochemistry of Sempervivum tectorum in vitro culture
    During the morphogenesis in organogeny way, the explants expanded and turned green initially, and embryonic cell lump formed on the surface of explants, and then grew into plantlet. The results indicated that all the testing indexes were increased during the formation of the organ in culture and did not reduce until the organ formed. In terms of the curve, the content of protein, amino acid, nucleic acid, soluble sugar, amylum and the bioaction of proteinase, mylase, peroxidase both changed consistent with the morphogenesis of this approach.
    5. Close relationships between the change of the characters of physiology and biochemistry and different development phase of organogeny-type morphogenesis approaches.
    The calli may be induced when the contents of protein, amino acid, nucleic acid, soluble sugar(dry-weight), were relatively higher, whereas the contents of amylum, Vc were relatively lower. During callus accretion the contents of protein, were relatively lower, whereas the contents amino acid, nucleic ac
引文
1.莱斯利·布伦尼斯,《药用植物》[M].中国友谊出版公司,2000,216-217.
    2.具有保肝作用的屋顶长生草对高血脂大鼠脾细胞的免疫反应性[M].国外医药 植物药分册,1995,10(6):263(英)/PHytother Res.1994,8.33-37.
    3. Housleeks-Pests and diseases, http://www.housleeks.freeserve.co.uk/semps/pests.htm.
    4.兑宝峰,锦晃星.长生草[J].园林,2002,(7):38-39.
    5.颜昌敬.植物组织培养手册[M].上海,上海科学技术出版社1990.
    6.罗士韦.植物组织与细胞研究工作的进展及其应用.植物生理学报.1978,(4):91-112.
    7.刘选明.同源四倍体龙芽百合诱导及其形态发生的细胞学与生理生化特性的研究.博士论文.1995.
    8.孙勇如、安易培.植物原生质体培养[M].北京,科学技术出版社,1991.
    9.胡含.禾谷类作物单倍体与作物改良[M],《植物生物技术与作物改良》,北京,科学技术出版社,1990,83-86.
    10.孙敬三,陈维伦.植物生物技术与作物改良.北京,科学技术出版社,1990,128-143.
    11.姜明兰,刘声远,钟文田等.组织培养生产高山红景天有效成分的研究.沈阳农业大学学报,1994,25(4):355-359.
    12. Miros&lstrok, awa Furmanowa. Rosavin as a product of glycosylation by Rhodiola rosea (roseroot) cell cultures. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, Jan 1999, 56(2):105-110.
    13.许建峰,冯朴荪.高山红景天愈伤组织的诱导及培养研究.应用与环境生物学报.1995,1(1):19-25.
    14.陈玉珍,卢存福.珍稀濒危植物红景天生物学研究进展.特产研究,2001,24(4):51-54.
    15.罗明,卓娅高.高山红景天的组织培养.新疆农业科学,1996,(3):123-125.
    16.张弓,张继福.高山红景天组织培养技术研究.特产研究,1995,(4):26-26,32.
    17.崔广荣,韦帮勤.提高长寿花试管苗增殖和生根率的研究.特产研究,2003,4:15-18.
    18.陈利萍,汪炳良,陈竹君.长寿花叶片愈伤组织的诱导和植株再生.植物生理学通讯,1999,35(6):471.
    19.邱宁宏,罗林会,王勤,等.景天的组培快繁技术.特种经济动植物,2003,6(12):20-20
    20.催凯荣,戴若兰.植物体细胞胚发生的分子生物学[M].科学出版社,2000.
    21.曾令波,周吉源.半夏组织培养中不同植物生长调节物质对形态发生的效应.安徽师大学报,1995,18(3):42-46.
    22.张松,温孚江,抗生素对大白菜组织培养形态发生的影响.山东农业大学学报:自然科学版,2000,31(4):385-388.
    23.储成才,李大卫.不同培养条件对朱顶红形态发生的影响.信阳师范学院学报:自然科学版.1991,4(1):85-90.
    24.潘战生,张丕方.烟草叶组织培养中光与激素对形态发生的调节作用.实验生物学报,1989,22(3):
    
    279-282.
    25.韩碧文,刘淑兰.植物体细胞胚发生.植物生理学通讯,1988,1:9-15.
    26.周俊颜.植物体细胞在组织培养中形成胚状体.植物生理学报,7:379-386.
    27.谢志兵,鲁旭东.狮猴桃试管苗形态发生的激素效应.农业与技术,2003,23(2):101-102.
    28.许智宏,刘桂云.烟草叶组织培养中愈伤组织和芽形成的细胞学观察.植物学报,1980,22(1):1-5.
    29.由翠荣,曲复宁,仙客来(Cyalaman persicum,Mill).组织培养中不定芽形态发生的组织细胞学研究.烟台大学学报:自然科学与工程版.2002,15(4):273-279,312.
    30.王亚馥,王仑山.枸杞组织培养中形态发生的细胞组织学观察.兰州大学学报:自然科学版.1989,25(4):88-92.
    31.张丕方,王崎.烟草薄层培养中细胞早期动态的研究.植物学报,1989,31:422-426.
    32.王吉之,李克勤.槐树子叶组织培养中的形态发生研究.实验生物学报,1993,26(1):39-49.
    33.王凯基.油橄榄组织培养的细胞学研究.植物学报,1979,21(2):124-130.
    34.刘选明.结球生菜叶片组织培养及器官发生的细胞学观察.湖南农学院学报,3:233-240.
    35.中国科学院上海植物生理研究所.植物细胞与组织培养[J].上海,上海科学技术出版社,1978.
    36.张静兰,唐定台,徐桂芳等,防线素D和环已亚胺对激素诱导绿豆子叶脱分化及其核酸、蛋白质代谢的作用,植物学报,1982,24:433-499.
    37.李军生,李春瑶.甘蔗的植物组织培养.广西植物,1990,10(1):75-79.
    38.戴均贵,周吉源.华黄芪离体形态发生过程中生理生化特性变化的研究.华中师范大学学报:自然科学版,1997,31(2):220-224.
    39.屈妹存,刘选明.百合鳞片细胞形态发生中生理生化特性研究.生命科学研究,1998,2(4):288-294.
    40.许煜泉,史益敏.番茄离体子叶培养的形态发生及过氧化物酶的动态上海农学院学报,1992,10(2):121-126.
    41.郏艳红,熊庆娥.植物体细胞胚胎发生的研究进展.四川农业大学学报,2003,21(1):59~63.
    42. Thorpe. T. A. and T. Murashige. Some histochemical changes underlying shoot initiation in tobacoo callus cultures, Can, J. Bot, 1970, 48: 277-285.
    43.王熊.激素对植物培养细胞生长分化的调节作用[J].细胞生物学杂志,1983,5(2):40-45.
    44. Chen. C.H. et al., In vitro induction of tetraploid plants from colchicines treated diploid daylily callus. EupHytica. 1979,28:705-709.
    45. Chlyah. H., Etude histologique, de la neoformation de meristemes caulinaires et radicularies a partir de segments dentrenoeuds de Torenia fournieries lind. eultves in vitro. Can. J. Bot. 1974,52:473-476.
    46.王熊,罗士韦.烟草组织培养过程中过氧化物酶同工酶的变化.植物生理学报,1981,7(1):73-80.
    47.庄东红,林虹.大白菜子叶培养过程中POD同工酶和可溶性蛋白质含量的变化.汕头大学学报:
    
    自然科学版.2002,17(1):64-68,73.
    48.中国科学院上海植物生理研究所.《现代植物生理学实验指南》[M],上海,科学出版社,1998,344-346.
    49.王亚馥,张德华.小麦组织培养中体细胞胚胎发生的细胞胚胎学及淀粉消长动态的研究.实验生物学报,1993,26(3):259-267.
    50.陈德海,杨涛.草莓组织培养细胞发育过程的电镜观察.厦门大学学报:自然科学版.1999,38(6).-918-923.
    51.汪丽虹,王亚馥.伊贝母组织培养形态发生过程中几种糖类含量及淀粉酶和蔗糖酶活力动态研究.西北植物学报,1991,11(3).-194-198.
    52.曹孟德,李家儒.香荚兰脱分化过程中大分子物质含量的变化.华中科技大学学报:自然科学版,2001,29(3).-101-102.
    53.蔡朝晖,董婷霞.蒲圻贝母组织培养鳞茎形成过程中生理生化变化研究.武汉植物学研究,1999,17(4).-314-318.
    54.孙辉,陆敏,沙打旺.组织培养中脱分化细胞的超微结构及细胞核的动态变化.武汉植物学研究,1994,12(1):53-57.
    55.董合忠,傅振华.棉花组织培养胚状体发生的生理生化研究.中国棉花,1997,24(2):10-11.
    56.崔凯荣,邢更生.体细胞胚发生的生化基础.生命科学,2001,13(1):28-33.
    57.魏琴,曹有龙.枸杞髓组织培养中体细胞胚胎发生与过氧化物酶同工酶分析.广西植物,2000,20(2):168-171.
    58.季彪俊,江树业,陈启锋等.活性炭在水稻花药培养中的作用.福建农业大学学报,1998,27(1):16-19.
    59.张良波,彭晓英,周朴华.观赏、药用植物—屋顶长生草.植物杂志,2003,6:29
    60.高疆生、张卫芳、段黄金等.克服香石竹试管苗玻璃化研究.北方园艺,2001,138:34-36.
    61.槠成才、李大卫.牡丹组织培养中玻璃化现象的出现及初步观察.信阳师范学院学报(自然科学版),1998,6(1):98-100.
    62.郭启高、宋明、梁国鲁等.我国关于玻璃化现象的研究进展.西南园艺,1999,27(3):3-5.
    63.梁海曼、周菊华.试管苗玻璃化现象的生理生化和机理探讨.武汉植物学研究,1994,12(3):281-288.
    64.郭军战,舒庆艳,王丽玲等.四倍体刺槐组织培养中的外桓体选择和消毒研究.西北林学院学报,2002,17(1):15—18.
    65.陶处敏,章镇,林惠莲等.葡萄无菌苗体系建立试验初探试验研究.中外葡萄与葡萄酒,2003(2):16-18.
    66.湖南农学院植物教研室.《植物学实验实习指导书》,湖南农学院,1982,58-64.
    67.徐青.植物石蜡切片双重染色技术的改进.宁夏农学院学报,1999,20(2)89-90.
    68.周智彬,李培军.我国旱生植物的形态解剖学研究.干旱区研究,2002,19(2):35-40.
    69.沈宗根,Yitzchak Gutterman,胡正海.中国芦荟叶的形态解剖学研究.热带作物学报,
    
    2000,21(3):45-38.
    70.王凯基.植物激素对驳骨丹茎愈伤组织生长和器官再生的作用.实验生物学报,1981,04(4):332-341.
    71.过全生.杨树叶薄层培养中不定芽形态发生的细胞组织学研究.植物学报,1997,39(12):1131-1137.
    72.詹亚光,杨传平,王玉成.白桦组培离体再生的解剖学研究.林业科学,2002,38(6):142-145.
    73. Lu Minfu, Taizo Hogetsu, Yuji Ide et al. Effects of α-aminooxy-β-pHenylpropionic acid and α-aminooxyacetic acid on differentiation of adventitious buds in the callus derived from stem segments of Betula platypHylla Sukatchev var. Japonica tiara. J JPn For Soc, 1993,75(4):331-337.
    74.余迪求 邓庆丽.金鱼草下胚轴不定芽发生及细胞学观察.中山大学学报:自然科学版,1996,35(4):75-79.
    75.胡继金,孔振兰.甜橙完整叶片培养芽直接发生与解剖观察.果树科学.1990,7(2):81-84.
    76.袁晓华.植物生理生化实验[M].北京,高等教育出版社,1983,1-5.
    77.杨红旗.湖南农业大学生物化学教研室.
    78.朱广廉,钟诲文,张爱琴.植物生理学实验[M].北京大学出版社,1990,P134-136.
    79.山东农学院,西北农学院.植物生理学实验指导[M].山东科学技术出版社,1980,P23-26.
    80.朱广廉,钟诲文,张爱琴.植物生理学实验[M].北京大学出版社,1990,P226-228.
    81.华东师范大学生物系植物生理教研组.植物生理学实验指导[M].人民教育出版社,1980,158-161.
    82.中国科学院上海植物生理研究所.《现代植物生理学实验指南》[M],上海,科学出版社,1998,144-146,200.
    83.毛盛贤,向华.同工酶遗传学引论[M].首都师范大学出版社,2000,46-95.
    84.李勤报,谭保才,梁厚果等.烟草愈伤组织继代培养和分化期间蛋白质代谢的比较研究.植物学报,1993,35(3):179-186.
    85.邢小黑,高明尉.水稻愈伤组织培养过程中核酸含量和过氧化物酶活性变化.作物学报,1994,20(2):253-256.
    86.余迪求,洪维廉.甜菊叶肉细胞脱分过程中超微结构的研究.Acta Botanica Sinica(植物学报:英文版),1993,35(7):499-505.
    87.郝建平,裴雁曦.荞麦愈伤组织分化与过氧化物酶活性及其同工酶关系的研究.木本植物研究,2000,20(4):416-419.
    88.李俊明.植物组织培养教程[M].北京,北京农业大学出版社,1992,1-10,77-96.
    89.余迪求.金鱼草(Antitthinum majus L.)下胚轴外植体不定芽的高频再生.DEVELOPMENTAL AND REPRODUCTIVE BIOLOGY(发育与生殖生物学报),1995,4(2):30-38.
    90.倪得祥.光质对毛地黄叶组织培养物中大分子物质含量及过氧化物酶同工酶谱的影响[M].《中国植物学会60周年大会论文集》,1993,北京,科学技术出版社,555.
    
    
    91.刘涤.植物细胞分化基因调节研究的某些现状.植物生理学通讯,1984,3:13-21.
    92.肖洁凝,林慧贤.6—BA和硫酸腺素对香蕉试管苗的过氧化物酶及其同工酶酶谱的影响.广州师院学报:自然科学版,1997,(2):64-67.
    93.刘选明.结球生菜形态发生过程中过氧化物酶及同工酶的研究.湖南农学院学报,1990,4:703-707.

© 2004-2018 中国地质图书馆版权所有 京ICP备05064691号 京公网安备11010802017129号

地址:北京市海淀区学院路29号 邮编:100083

电话:办公室:(+86 10)66554848;文献借阅、咨询服务、科技查新:66554700