用户名: 密码: 验证码:
竹亚科各属命名种遗传多样性的ISSR分析及园林应用研究
详细信息    本馆镜像全文|  推荐本文 |  |   获取CNKI官网全文
摘要
本研究以福建农林大学百竹园中竹亚科的30个属命名种为研究对象,从DNA多态性分析的ISSR分子标记方法着手,利用DNA分子标记技术系统的研究遗传背景十分复杂的竹子种质资源,对其遗传多样性、亲缘关系进行研究,开展种质资源的分子鉴定,并建立有效的DNA指纹图谱,同时研究竹子在园林上的应用。
     采用ISSR分子标记技术,对我国竹亚科30个属的命名种即:绿竹、短穗竹、业平竹、箬竹、寒竹、慈竹、牡竹、大节竹、瓜多竹、唐竹、酸竹、巨竹、矢竹、少穗竹、簕竹、刚竹、茶秆竹、梨竹、思劳竹、泰竹、泡竹、单枝竹、空竹、巴山木竹、镰序竹、倭竹、大明竹、箭竹、玉山竹、赤竹进行遗传多样性分析。实验研究竹亚科植物的DNA提取方法,研究竹类植物普遍适用的ISSR-PCR反应体系进行优化,筛选出18条条带清晰和稳定性较好的引物,使用Popgene32软件进行遗传多样性分析,获得遗传相似度和遗传距离的信息。用SPSS13.0软件,得出了30个竹种的ISSR树状聚类图。本实验得到结论如下:
     (1)采用单因素多水平梯度筛选法进行实验设计,对Mg2+、模板DNA、TaqDNA聚合酶、dNTPs、引物这5种因素进行体系优化,建立竹亚科30个属命名种的ISSR-PCR扩增体系,即20μl反应体系中模板DNA40ng,引物0.6μmol·L~(-1),TaqDNA聚合酶1.0U,Mg2+2.5mmol/L,dNTPs0.25mmol·L~(-1),1×buffer;并通过实验筛选得出相应引物的最佳退火温度。
     (2)从100条的ISSR随机引物中筛选出18条能够扩增出清晰的特异性条带的引物,对30个命名种进行遗传多样性的分析,一共扩增出253个清晰的位点,其中多态性位点有253个,占总位点的100%;每个引物平均扩增出14个位点,而多态性位点百分比都为100%。
     (3)30个竹种的多态性百分比变化范围在23.72%~44.27%之间。PPB最大的是箭竹,PPB最小的是绿竹,说明这两个群体间的适应能力差异性较大。其它竹种的多态性也都较高,30个竹种的遗传基础范围广,遗传多样性较丰富。
     (4)30个竹种的观测等位基因数(Na)为2.0000个,有效等位基因数(Ne)为1.5756个,Nei’s基因多样性指数(h)为0.3437,Shannon多样性指数(I)为0.5178,多态位点百分率(PPB,%)为100%,多态位点有253个,同时30个竹种间的遗传多样性Ht=0.3463。说明30个竹种的遗传多样性还是相当丰富,这为竹类植物多样性提供了分子基础。
     (5)利用软件Popgene32软件,分析30个命名种的遗传距离在之间0.104~0.6207,平均为0.4414,遗传距离最大0.6207,在9号瓜多竹和27号大明竹之间;遗传距离最小的是0.104,在28号箭竹和29玉山竹之间。
     (6)采用的DNA聚类分析结果和传统的分类很多地方比较吻合,在这次试验研究的竹种中,如传统分类中的刚竹亚族的竹种大节竹、唐竹、短穗竹、刚竹,具有较近亲缘关系,都聚集在第六组分类中;而且牡竹族的倭竹、业平竹、寒竹也都集中于第六组分类中;而遗传传距离最小的箭竹、玉山竹种也同时出现在第五组中;传统分类中的倭竹亚族:业平竹和寒竹也在实验结果出现于倭竹亚族中;梨竹族的竹种也集中在第二和第五组。该实验结果和传统分类结果基本吻合,由此可见,DNA分子标记用于分析竹种间的亲缘关系和遗传多样性,具有较高的精确性和可靠性,同时可以作为竹子分类的参考依据。
     (7)本实验使用的18个引物,即UBC810、UBC811、UBC825、UBC827、UBC835、UBC836、UBC841和UBC857引物都能独立构建基于ISSR-PCR30个属命名种的数字指纹识别码。
     (8)采用传统的方法分类,主要根据竹子外部显著的形态特征,采用二歧归类方法进行分类和命名,通俗易懂,直观,具有普遍适用性,产生时间较早。ISSR分子标记是一种完全不同于传统分类的方法,揭示30个竹种的内在联系,全面反映了竹种间遗传多样性。而且学术性强,针对性强,适用群体单一,分类的可靠性和准确性较高。ISSR分子标记分类法是一种新的识别技术手段,为竹子的研究开辟了新的道路。
     (9)本实验通过对竹子在园林造景方面的研究,从遗传多样性、美学特征、空间关系、运用形式、角色扮演、城市绿地等方面进行分析,将传统的造园“因地制宜,师法自然”的思想和现代的“生态、低碳”的设计理念巧妙的结合,注重因境置竹和生物多样性保护,扩宽竹子造景的视野,为竹子的园林运用开辟了新的途径。但是当前还需积极探索新的设计思想和造景手法,竹子造景要进一步发展,还是任重而道远的。
This study’s research object is30named species of Bambusoideae from the Fujian Agriculture AndForestry University in bamboo garden as the,to bagin with the DNA polymorphism analysis of ISSRmolecular marker method,using DNA molecular marker to study bamboo’s germplasm resources whosegenetic background is very complicated,to study the genetic diversity,phylogenetic relationship,to carryout bamboo’s germplasm resources molecular identification,and establish effective DNA fingerprinting,at the same time Research on the application of bamboo in landscape.
     This study uses ISSR molecular marker technique to analyze China's30named species ofBambusoideae,The species are as follows:Dendrocalamopsis oldhami,Brachystachyum densiflorum,Semiarundinaria fastuosa,Indocalamus tessellatus,C.marmorea,Neosinocalamus Keng f.,Dendrocalamusstrictu,Icrassiflora McClure,Guadua amplexifolia J.S.Presl,Sinobambusa tootsi,Acidosasa chinensis,Gigantochloa atter,Pseudosasa japonica,Oligostachyum sulcatum,Bambusa arundinacea,Phyllostachysviridis,Pseudosasa amabilis,Melocanna baccifera,Schizostachyum pseudolima,Thyrsostachys siamensis,Pseudostachyum Ploymorphum,Monocladus saxtilis,Cephalostachyum fuchsianum,Bashania fargesii,Drepanostachyum falcatum,Shibataea kumasasa,Pleioblastus. gramineus,Fargesia spathacea Franch.,Yushania niitakayamensis,Sasa longiligulata McClure.Analyzing their genetic diversity, Thisexperiment study the DNA extraction method of30named bamboo species,studying bamboo plantsgenerally applicable ISSR-PCR optimization reaction system,screening out of18bands of clear and goodprimers, using Popgene32software to analyze genetic diversity,Getting genetic similarity and geneticdistance informations. Using SPSS13.0software,Generating polygenetic tree of genetic relationship of30bamboo species. The experimental results are as follows:
     (1) With the one-single and multi-level gradient testing method,To optimize system in five factors ofMg2+,template DNA,TaqDNA polymerase,dNTPs,and primer. in a total volum of20μL system whichcontained40ng template DNA,0.6μmol/L primer1.0U TaqDNA polymerase,2.5mmol/L Mg2+,0.25mmol/L dNTPs,1×buffer. Through experiments,screening the corresponding primer’s annealingtemperature.
     (2) screened18primers from the100ISSR random primers which can amplify clear and specific ands,With the analyzation of30named species’ genetic diversity,there are253polymorphic bands in253bands,a polymorphic rate of100%. Each primer amplified14polymorphic bands on everage,the polymorphic rate are all of100%.
     (3)30bamboo species polymorphism percentage change in the range of23.72%~44.27%. PPBlargest is Fargesia spathacea Franch, PPB minimum is Dendrocalamopsis oldhami, the two groups ‘sadaptability is different. Other bamboo species polymorphism are much higher,30bamboo species havewide genetic basis, and rich genetic diversity.
     (4)30bamboo species observed number of alleles (Na) is2, the effective number of alleles (Ne) is1.5756, Nei ' s gene diversity index (H) is0.3437, Shannon diversity index (I) is0.5178, the percentageof polymorphic loci (PPB,%) is100%polymorphic loci is253, and30bamboo species’ genetic diversityHt=0.3463.This description30species bamboo’s genetic diversity is quite rich, the bamboo diversityprovides a molecular basis.
     (5) With the software of Popgene32,analyze genetic distance of30named bamboo species between0.104~0.6207,the average is0.4414,the largest genetic distance is0.6207,that is between No.9Guaduaamplexifolia J.S.Presl and No.27P. gramineus,the smallest genetic distance is0.104,that is between28Fargesia spathacea Franch and29Yushania niitakayamensis.
     (6) the DNA cluster analysis results and the traditional classification in many places were compared,in this study of bamboo species, such as the traditional classification of Phyllostachys subfamily ofIcrassiflora McClure, Sinobambusa tootsik, Brachystachyum densiflorum, Phyllostachys viridis, havinga close phylogenetic relationship, gathered in the sixth group; and Dendrocalamus strictus subfamily’sShibataea kumasasa, Semiarundinaria fastuosa, Chimonolamluca marmoreal, gathered in the sixthgroup; and the smallest genetic distance is Fargesia spathacea Franch. And Yushania niitakayamensisalso appeared in the fifth group; the traditional classification Shibataea kumasasa subfamily: theexperimental results appear Semiarundinaria fastuosa and Chimonolamluca marmoreal be all inShibataea kumasasa subfamily. Melocanna baccifera subfamily are concentrated in the second and fifthgroups.The experimental results and the traditional classification results are basically consistent, therefore,DNA molecular markers for the analysis of bamboo species phylogenetic relationships and geneticdiversity, it has higher accuracy and reliability, and can be used as the reference basis of bambooclassification.
     (7) The experiment uses18primers,as follow,UBC810,UBC811,UBC825,UBC827,UBC835,UBC836,UBC841and UBC857primers all can independent constructe a digital fingerprint identificationcode of30named bamboo species based on ISSR-PCR.
     (8) Using the traditional method to classify, mainly according to the bamboo outside significantmorphological features, using two ambiguous classification method to classify and naming, easy, intuitive,and has general applicability, appear earlier. ISSR molecular marker is a method completely different fromthe traditional classification, revealing30bamboo’s immanent connection, fully reflects the bamboo genetic diversity. And the academic strong, pertinence strong, applicable groups is single, the classificationhas higher reliability and accuracy. ISSR molecular marker classification method is a new identificationtechnique means, opened up a new path to bamboo research.
     (9)The experiment based on bamboo in landscape studies, from genetic diversity, aestheticcharacteristics,space relations,application forms,cosplay,city green space and so on to analyse, thetraditional gardening thought about“suit the local conditions,obey the nature rule”and modern designconcepts about“ecological,low carbon”combined the two aspects together,pay attention to because ofHabitat home bamboo and biodiversity protection,broaden the horizons of bamboo landscape design,inorder to open a new way of bamboo garden using. But nowadays it need to explore the new design thoughtand design technique actively,to further development,it still has a long way to go.
引文
[1]国际竹藤组织.世界竹子资源概况[J].国际竹藤通讯,2005,3(1):30
    [2]蔡宝珍,金荷仙.竹子的生物学特性及其在风景园林中的应用[J].国际竹藤通讯,2010,8(4):39~43.
    [3]邱尔发,洪伟,郑郁善.中国竹子多样性及其利用评述[J].竹子研究汇刊,2001,20(2):11~14.
    [4]徐斌,任海清,江泽慧,张利萍,张玉婷.竹类资源标注体系构建[J].竹子研究汇刊,2010,29(2):6~10.
    [5]陈双林,应杰.竹子的观赏价值及开发利用[J].竹子研究汇刊,2000,19(2):13~17
    [6]刘兴东,董文渊,赵敏燕,傅建生.竹类植物园林应用研究现状与发展趋势[J].世界竹藤通讯,2005,3(4):1~4.
    [7]辉朝茂,胡冀珍,张国学,杨宇明.中国竹类多样性及其可持续利用研究现状和展望[J].世界林业研究,2004,17(1):50~54.
    [8]李睿,章笕,章珠娥,中国竹类植物生物多样性的价值及保护进展[J].竹子研究汇刊,2003,22(4):
    [9]石明旺,庞延军,王修强,杨永华.竹类植物分子生物学研究进展及展望[J].经济林研究,2006,24(2):63~68.
    [10]周延清.DNA分子标记技术在植物研究中的应用[M].化学工业出版社.1995~4.
    [11]卓仁英.竹子生物技术育种研究进展[J].浙江林学院学报,2003,20(4):424-428.
    [12]袁金玲.孝顺竹遗传多样性、再生体系构建及杂交育种研究[D].中国林业科学研究院博士学位论文,2010.
    [13]吴妙丹.毛竹EST-SSR标记的开发和利用[D].浙江农林大学硕士学位论文,2010
    [14]刘贯水.毛竹ssR位点引物开发及部分竹种系统学分析[D].中国林业科学研究院博士学位论文,2010.
    [15]郑海燕.利用RAPD、ISSR和SRAP标记技术构建红麻种质资源分子身份证[D].中国农业科学院硕士学位论文,2010.
    [16]利用RAPD, ISSR和SRAP标记技术构建红麻(Hibiscus cahnabinus L.)种质资源分子身份证[D].中国农业科学院硕士学位论文.2010.
    [17]Vos P AFLP:a new technique for DNA fingerprinting.Nucleid Acids Research,1995,23(21):4407~4414.
    [18] Williams J G K, Kuhelik A R, Livak J,et al,DNA poly morphis am plified by arbitary primers areuseful as genertic markers.Nucleic Acid Research,1990,18:6531-6535.
    [19]Welsh J,Mcclelland M.Fingerprinting genomes using PCR with arbituary primers.Nucleic Acids Resarch,1990,18:7213~7218.
    [20]任艳军.刚竹属(Phyllostachys)部分观赏竹种间亲缘关系的RAPD标记研究[D].2004四川农业大学.
    [21]杨光耀,赵奇僧.用RAPD分子标记探讨倭竹族的属间关系[J].竹子研究汇刊,2001,20(2):96~99.
    [22]吴益民,黄纯农,王君晖.四种竹子的RAPD指纹图谱的初步研究[J].竹子研究汇刊,1998,17(3):10~14.
    [23]高素萍,任艳军,陈其兵.刚竹属(Phyllostachys)23个观赏竹种间亲缘关系的RAPD分析[J].园艺学报,2006,33(3):566~570.
    [24]林同香,陈振光,戴思兰,等.RAPD技术在龙眼品种分类中的应用研究.植物学报.1998,40(12):1159~1165.
    [24]Zietkiewicz E,Rafalski A,Labuda D.Genome fingerprinting by simple sequence repeat(SSR)-anchoredpolymerase chain reaction amplification.Genomics,1994,20:176~183.
    [25]孙志娟,项艳,汪结明,沈周高.刚竹ISSR反应体系的正交优化[J].竹子研究汇刊,2007,20(4).
    [26]夏海涛.药用苦楝遗传多样性ISSR分析和遗传变异规律研究[D].福建农林大学硕士学位论文,2007.
    [27]孙志娟.刚竹属部分竹种遗传多样性的ISSR分析[D].安徽农业大学硕士学位论文,2008.
    [28]黄晓丹.甜橙种质资源的ISSR分析和遗传变异规律研究[D].浙江大学硕士学位论文.2006.
    [29]罗海燕,陈业渊.ISSR分子标记及其应用[J].安徽农学通报,2008,14(19):45~46.
    [30]肖炳光,杨本超.利用ISSR标记分析烟草种质的遗传多样性[J].中国农业科学,2007,40(10):2153~2161.
    [31]陶爱芬,祁建民,李爱青,等.红麻优异种质资源遗传多样性与亲缘关系的ISSR分析[J].作物学报,2005,31(12):1668~1671
    [32]王心宇,陈佩度,元增军,等.ISSR标记在小麦指纹图谱分析中的应用研究初探[J].农业生物技术学报,2001,9(3):261~263.
    [33]赵谦,杜虹,庄东红.ISSR分了标记及其在植物研究中的应用[J].分子植物育种,2007,5(6),123~129.
    [34]胡迪科.雷公藤遗传多样性的ISSR和SRAP分析[D].福建农林大学硕士学位论文,2011.
    [35]肖永太.大明竹属指纹图谱的研究[D].福建农林大学硕士学位论文,2011.
    [36]张连义,赵景娣,刘红葵等.指纹图谱技术在牧草种和品种鉴定上的应用及其研究进展[J].畜牧与饲料科学,2007,1:41~43.
    [37]明军,张启翔,茹广欣,晏晓兰,毛庆山.园林及园艺植物品种鉴定的DNA分子标记技术[J].世界林业研究,2003,16(5):12~16.
    [38] Friar E, Kochert G. A study of genetic variation and evolution of Phyllostachy (Bambusoideae:Poaeeae)using nulear restriction fragment length polymorp hisms[J]. Theoretical and Applied Genetics,1994,(89):265~270.
    [39]Lai C C, Hsiao J Y.Genetic variation of phyllostachys pubescens(Bambusoideae,Poaceae)in Taiwan based onDNA polymorphisms[J]. Bot.Bull.A cad.Sin.1997,38:145~152.
    [40]邢新婷,费学谦,姜景民.撑篙竹遗传变异的RAPD分析[J].林业科学研究,2003,16(6):655~660.
    [41]Hsiao J Y,Lee S M.Genetic diversity and microgeographic dirrerentiation of Yushan cane(Yushanianiitakayamensis;Poaceae)in Taiwan.Molecular Ecology,1999,8(2):263~270.
    [42]杨光耀,赵奇僧.苦竹类植物RAPD分析及其系统意义.江西农业大学学报,2000,22(4):551~553
    [43]李淑娴,尹佟明,邹惠渝等.用水稻微卫星引物进行竹子分子系统学研究初探[J].林业科学,2002,38(3):42~48..
    [44]庞延军,杨永华,胡成华,陆军,郑康乐.从RAPD看肿节少穗竹的分类地位问题初探[J].南京大学学报(自然科学版),1998,34(5):531~535.
    [45]邢新婷,江泽慧.分子标记在竹类植物遗传多样性保护中的应用[J].世界竹藤通讯,2004,2(3):12~15.
    [46]张闪,汤定钦,竹类植物DNA分子标记研究的现状与问题点[J].竹子研究汇刊,2007,26(1):10~14.
    [47]李林,董敦义,丁雨龙.竹类分子系统学中的DNA标记[J].林业科技开发,2009,23(1):10~15.
    [48]娄永峰.雷竹不同变异类型的遗传多样性分析[D].浙江农林大学硕士学位论文,2010.
    [49]张闪,李俊彬,李永欣等.金银花ISSR-PCR反应体系的建立和优化[J].农业生物技术科学,2008,24(11):73~77.
    [50]王晓明,李俊彬,李永欣等.金银花ISSR-PCR反应体系的建立和优化[J].农业生物技术科学,2008,24(11):73~77.
    [51]邱长玉,高国庆,陈伯伦等茉莉花ISSR-PCR反应体系的建立[J].北方园艺,2008(2):214~217.
    [52]张雷凡,高燕会,朱玉球等.石蒜属植物种质资源ISSR-PCR反应体系的建立[J].浙江林学院学报,2007,24(2):156~161.
    [53]陈大霞,李隆云,鲁成等.黄连ISSR反应条件优化的研究[J].植物研究,2007,27(1):77~83.
    [54]朱柏芳,朱笃,邓荣根.穗花杉ISSR引物反应条件优化的的优化与筛选[J].植物研究,2006,26(3):318~322.
    [55]杨华,宋绪忠,尹光天等.黄藤杉ISSR反应体系的条件优化[J].福建林学院学报,2006,26(2):152~155.
    [56]金则新,李钧敏.濒危植物夏腊梅ISSR扩增条件的优化[J].植物研究,2007,21(1):68~72.
    [57]刘海河,侯喜林,张彦萍.西瓜ISSR-PCR体系正交优化研究[J].果树学报,2004,21(6):615~617.
    [58]曾建飞.中国植物志第九卷第一分册[M].北京:科学出版社,1996:1~781.
    [59]郑清芳,郑蓉.观赏竹的特征检索及用途分类[J].竹子研究汇刊,2002,21(3):25~32.
    [60]赵奇僧,汤庚国.中国竹子分类的现状和问题[J].南京林业大学学报,1993,17(4):1~8.
    [61]郑蓉,郑维鹏,方伟.DNA分子标记在竹子分类研究中的应用[J].福建林业科技,2006,33(3).
    [62]芳纯.中国观赏竹种简介[J].竹类研究,1998,(1):150~156.
    [63]张新明.观赏竹在园林绿化中的功用及其发展方向[J].竹子研究汇刊,1999,18(4):22~26.
    [64]邓海鑫.观赏竹种引种试验及园林配景应用研究[D].南京林业大学农业推广硕士专业学位论文,2006.
    [65]小燕,邓光华.论观赏竹的美学特征及其园林造景[J].江西农业大学学报,2000,22(4):585~588.
    [66]王向荣.林菁.竹园——诗意的空间,空间的诗意[J].中国园林,(2):2007,26-29.
    [67]郑清芳,连巧霞,郑蓉等.观赏竹的园林运用,分类及评价分析[J].福建农学院学报,2002,22(4):295~298.
    [68]刘静怡,王云.竹在现代园林中的应用与发展[J].上海交通大学学报(农业科学版),2006,24(1):94~98.
    [69]关传友.中国竹子造园史考[J].竹子研究汇刊,1994,07:54-60.
    [70]王杭飞,竹子与园林[J].竹子研究汇刊,2011,30(2):59~62.
    [71]李宝昌,汤庚国.古典园林竹子造景的艺术手法[J].竹子研究汇刊,2000,20(3):161~168.
    [72]赵娜.风景林中竹景的营建研究[D].华中农业大学硕士学位论文,2009.
    [73]徐忠灿.美不失雅土不落俗——浅谈园林中的竹子建筑[J].竹子研究汇刊,2001,20(2):59~66.
    [74]张蕾,马军山.浅议竹子在造景中的应用[J].竹子研究汇刊,2007,26(4):54~58.
    [75]马海艳.观赏竹在上海城市公园绿地中的应用调查与分析[D].南京农业大学硕士学位论文,2007.
    [76]董建明.江苏省竹类植物资源调查及景观应用研究[D].南京林业大学硕士学位论文,2008.
    [77]苏雪痕.植物造景[M].北京:中国林业出版社,1994.
    [78]关传友.中国的竹景观资源[J].竹子研究汇刊,2003,22(2):73~78.
    [79]孙晓睿.竹类公园竹景观评价研究[D].四川农业大学硕士学位论文,2011.
    [80]项瑜,张乃华,汪爱君,黄超钢,项步乾.竹子在千岛湖林相中的应用[J].世界竹藤通讯,2010,8(2):24~27.
    [81]蔡宝珍,金荷仙.竹子的生物学特性及其在风景园林中的应用[J].国际竹藤通讯,8(4):39~43.
    [82]张蕾.竹子在现代园林中的应用研究[D].浙江林学院硕士学位论文,2008.

© 2004-2018 中国地质图书馆版权所有 京ICP备05064691号 京公网安备11010802017129号

地址:北京市海淀区学院路29号 邮编:100083

电话:办公室:(+86 10)66554848;文献借阅、咨询服务、科技查新:66554700